Durchfall bei Kleinsäugern – labordiagnostische Möglichkeiten

Die makroskopische und mikroskopische Kotuntersuchung gehören zu jeder Durchfallabklärung dazu („Pflicht“)!

 

Die makroskopische Untersuchung (Menge, Farbe, Form, Größe und Fasergehalt) lässt bereits Rückschlüsse auf Futteraufnahme (viel, wenig), Fütterung (faserarm, kohlenhydratreich), Beimengungen (Haare, Fremdkörper) und bestimmte gastrointestinale Ursachen (Megacolon, Typhlocolitis etc.) zu und kann einfach in der Praxis erfolgen.

Die mikroskopische Untersuchung erfolgt, je nach Indikation, aus Frischkot (in der Praxis) oder Sammelkot (in Praxis oder Labor). Frischkot (Rektalabstrich oder frisch abgesetzt) ist besonders für den Nachweis von beweglichen Einzellern geeignet. Diese sind nur kurz im abgesetzten Kot lebensfähig und durch die Transportzeit zum Labor dort meist nicht mehr nachzuweisen. Die Untersuchung von Sammelkot erhöht die Sensitivität der Untersuchung v. a. in Bezug auf intermittierend ausgeschiedenen Parasitenstadien und Hefen (Cyniclomyces guttulatus). Hefen sind bis zu einem gewissen Grad physiologische Bestandteile der Darmflora und gelten bei steigender Anzahl als hervorragender Indikator für Dysbiose und den Kohlenhydratgehalt in der Nahrung.

Für ein Nativpräparat reicht ein frischer Rektalabstrich mit einem Tropfen lauwarmem Wasser oder ein Tropfen einer Kotsuspension (erbsengroße Kotmenge) auf einem Objektträger mit Deckglas aus. Besteht bei Kaninchen Passalurus-Verdacht, ist es am erfolgversprechendsten mit einem Klebestreifen den Analbereich direkt zu beproben, diesen auf einem Objektträger aufzukleben und direkt unter dem Mikroskop zu untersuchen.

Sammelkot (Kot von drei Tagen) wird i. d. R. nach Anreicherung durch Flotation untersucht. Bei der Flotation werden leichte Parasitenstadien (Kokzidienoozysten, Nematodeneier etc.) in Flotationslösung mit höherer Dichte an die Oberfläche transportiert und können mit einem aufgelegten Deckgläschen abgenommen werden. Die Anreicherung kann mit kommerziell erhältlichen Testkits auch in der Praxis durchgeführt werden.

Die einfachste Art mikroskopische Kotpräparate, gerade von Kaninchen, schnell durchzuscannen, ist zunächst in der 1:100 Vergrößerung (10er Objektiv) die Ebenen einzustellen, in der die Hefen gut zu sehen sind. Hefen sind ca. 10–15 µm groß und somit die kleinsten interessanten Stadien bei der Kotuntersuchung. Kokzidienoozyten (ca. 30 µm) und v. a. Nematodeneier (ca. 100 µm) sind deutlich größer und so einfacher zu finden (Abb. 3).

Worauf geachtet werden sollte, ist, dass Pollen, andere Pflanzenbestandteile und Milbeneier nicht mit Parasitenstadien verwechselt werden (Abb. 4).

Eine andere Form der Anreicherung, das Auswanderungsverfahren (nach Baermann-Wetzel), wird zum Nachweis von Crenosoma striatum-Larven (Lungenwurmlarven) angewendet. Da schneckenfressende Igel (europäische Igel) neben anderen Endoparasiten auch häufig stark mit Lungenwürmern infiziert sind, sollte bei ihnen, zusätzlich zur Untersuchung nach Flotation (Capillaria spp.), auch immer die Kotuntersuchung mittels Auswanderung (Crenosoma striatum) angefordert werden.

Je nach Tierart und Verdacht sind weitere Kotuntersuchungsverfahren („Kür“) sinnvoll:

Giardien- (v. a. Chinchilla und Frettchen) und Cryptosporidien-Stadien (Mäuse, Ratten, Hamster) werden am effektivsten mittels ELISA detektiert. Die Sensitivität der im Labor verwendeten Enzym-Immunoassays (EIA) ist wesentlich höher als die der Praxis-Schnelltests (Nicht-Enzym-Immunoassays), die z. T. auch falsch-positive Ergebnisse liefern und somit eher als Screeningtests dienen.

Für einige Erreger, v. a. Viren (z. B. Rota-, Corona-, Aleuten-disease-Virus (ADV)), aber auch Bakterien (Salmonella spp., Lawsonia intercellularis) und einige Protozoen (z. B. Cryptosporidien-Differenzierung) werden auch PCR-Tests angeboten. Die PCR gilt als sehr sensitiv, ist aber wegen der intermittierenden Ausscheidung der Erreger auch nur positiv beweisend.

Die zusätzliche bakteriologische Untersuchung (BU) ist immer sinnvoll bei Kleinsäugern mit weniger Darmflora (Carnivora, Insectivora, Granivora). Bei Herbivoren mit ausgeprägter, physiologischer Darmflora (alles kann vorkommen) ist sie häufig wenig aussagekräftig, außer es werden gezielt humanpathogene Bakterien (Salmonellen etc.) oder spezielle Erreger, wie Klebsiellen (V. a. Typhlocolitis), gesucht.

Die mykologische Untersuchung (MU) muss selten separat durchgeführt werden, da Hefen (Gradmesser der Dysbiose, selten primäres Pathogen) bereits im Nativ- oder Flotationspräparat sichtbar sind. Gerade beim Hamster sollte aber ggf. auch an Candida spp. als Durchfallauslöser gedacht werden. Diese sind mikroskopisch nicht identifizierbar und müssen mittels Kultur angezüchtet werden.

Heutzutage erfolgt der Virusnachweis im Kot mit erregerspezifischen PCRs. Im Gegensatz zu der früher verwendeten Elektronenmikroskopie, bei der alle vorhandenen Viren detektierbar waren, muss heutzutage gezielt auf einzelne Viren getestet werden. Dies erklärt, warum Virusenteritiden zwar weiterhin vorkommen, jedoch unterdiagnostiziert sind.

Welche Kotuntersuchung bei welchen Kleinsäugern sinnvoll/wichtig sind, ist in Tab. 1 für Sie aufgelistet.

 

Tab. 1: Sinnvolle Kotuntersuchungen bei verschiedenen Kleinsäugern (rot/fett = „Pflichtuntersuchungen“)

Gruppe	Herbivore			Granivore		Carnivore	Insectivore
Tierart	Kaninchen	Meerschwein	Chinchilla, Degu	Maus, Ratte, Rennmaus	Hamster	Frettchen	Igel
Haupterreger	Eimeria, Passalurus	Protozoen	Giardien	Oxyuren	Oxyuren	Eimeria, Giardien	Nematoden
Untersuchungsverfahren
Makroskopie	X Caecotrophe?	X	X	X	X	X	X
Mikroskopie
– nativ (frisch)	X	X	X	X	X	X	X
– Flotation	X	X	X	X	X	X	X
– Auswanderung							X Schneckenfresser
ELISA
– Giardien			X	(X)	(X)	X
– Cryptosporidien				X (Futtertiere)
BU/MU	spez. Verdacht		?	(X)	(X) Candida	X	X
PCR	Rotaviren, Salmonellen			Differenzierung, Cryptosporidien	Lawsonia	Coronaviren, ADV

 

Darmparasiten – wie häufig sind sie wirklich?

Aktuelle Auswertungen von eingesandten Kotproben (Csokai & Müller 2018, Csokai et al. 2024) zeigen, dass Endoparasiten in nur 4–28 % mikroskopisch (nach Flotation) detektiert wurden. Die meisten Endoparasiten-positiven Proben waren bei Rennmäusen (27,8 %), Ratten (27,5 %), Kaninchen (27,5 %) und Chinchilla (21,9 %) zu finden; bei Frettchen waren es nur 3,8 % (Abb. 7).

Zu den häufigsten Erregern zählten die Protozoen mit Giardia spp. (Chinchilla 21,9 %, Ratte 13,1 %, Degu 10,7 %), Eimeria spp. (Kaninchen 20,6 %, Meerschweinchen 3,5 %) und Oxyuren (Gerbil 21,1 %, Maus 13,2 %, Hamster 9,4 %). Da es sich i. d. R. um Sammelkotproben handelt und die Nachweishäufigkeit v. a. von beweglichen Einzellern mikroskopisch mit der Zeit stark nachlässt, ist die Frage wie viele Proben auf diese Parasitenpopulation bezogen falsch-negativ getestet werden.

 

Merke: Die meisten Durchfälle bei Kleinsäugern sind nicht endoparasitär bedingt!
Diätische Ursachen und nachfolgende Dysbiosen sind wesentlich häufiger.

 

Fazit:

Wissen zu tierartspezifischen Besonderheiten und Krankheitsprädispositionen ist Voraussetzung für eine erfolgreiche Durchfallaufarbeitung. Die Kotuntersuchung ist wichtig und gehört zur Abklärung dazu – das Gesamtbild aber auch! Denn ist die Kotuntersuchung negativ und die Fütterungsoptimierung nicht ausreichend, helfen andere weiterführende Untersuchungen bei der Ursachenfindung.

Dr. Jutta Hein, Dr. Britta Beck

 

Unsere Leistungen zum Thema im Überblick
Einzelverfahren
# 149	Parasitologische Untersuchung (Flotation, SAFC)
# 585	Auswanderungsverfahren (Lungenwurmlarven)
# 187	Cryptosporidien-Antigen (EIA)
# 185	Giardia sp.-Antigen (EIA)
Kotprofile
# 2170	Kotprofil Kaninchen und Nager (Bakteriologie inkl. Salmonellen, Mykologie inkl. Cyniclomyces guttulatus, Endoparasiten)
# 1177	Kotprofil Frettchen (Bakteriologie inkl. Salmonellen, Mykologie, Endoparasiten, Giardia sp.-Antigen (EIA))
# 87	Parasitenprofil Frettchen und Chinchilla (Endoparasiten, Giardia sp.-Antigen (EIA))
# 89	Parasitenprofil Igel (Endoparasiten, Auswanderungsverfahren (Lungenwurmlarven))