Dermatophyten beim Kleinsäuger – Wer bekommt’s? Wer überträgt’s? Wie diagnostizieren?

Tab. 1: Vorkommen und Häufigkeit von Dermatophyten bei Kleinsäugern: **** häufig, ** selten, * sehr selten;
T.=Trichophyton, M.=Microsporum, N.=Nannizzia, A=Arthroderma; alte Benennung je nach Zeitpunkt der Veröffentlichung; Quellen: Berlin et al. 2020, de Matos und Kalivoda 2013, ESCCAP 2021, Kraemer et al. 2012, Overgaauw et al. 2017, Pignon und Mayer 2011, Vangeel et al. 2000

Tierart	Dermatophyten
Meerschweinchen	T. benhamiae (T. mentagrophytes)****, M. canis*, N. gypsea (M. gypseum)*, T. equinum (M. equinum)*, M. audouinii*, A. quadrifidum (T. terrestre)*
Kaninchen	T. benhamiae (T. mentagrophytes)**, M. canis*, N. gypsea (M. gypseum)*, T. terrestre*
Frettchen	M. canis**, T. mentagrophytes**
Chinchilla	T. mentagrophytes**, Microsporum spp.*
Ratte	T. mentagrophytes** (v. a. asymptomatische Träger), Microsporum spp.*
Maus	T. mentagrophytes ** (v. a. asymptomatische Träger)
Gerbil	T. mentagrophytes **, N. gypsea (M. gypseum)*
Hamster	T. mentagrophytes**, Microsporum spp.*
Afrikanischer Weißbauchigel	T. erinacei**** M. canis*, N. gypsea (M. gypseum)*

 

In einer weiteren, aktuellen, deutschen Studie bei Meerschweinchen wurden sowohl Zucht- als auch Heimtiermeerschweinchen untersucht (Berlin et al. 2020). Von insgesamt 21 privaten Zuchtbeständen wurden 68,8 % (262/381) der Tiere positiv auf Dermatophyten getestet – 55,4 % davon auf T. benhamiae, 13,4 % auf andere (7,1 % T. interdigitale, 6,0  % T. rubrum, 2,6 % T. erinacei, 2,3 % T.  verrucosum, 1,3 % T. mentagrophytes). 92,7 % aller Tiere waren asymptomatische Träger. Geschlechtsabhängige Unterschiede konnten nicht festgestellt werden. Langhaarrassen mit Locken (74,0 %) sowie Rexmeerschweinchen (68,1 %) waren öfter betroffen als Kurzhaarrassen, Tiere in Innenhaltung (67,2 %) öfter als Tiere in Außenhaltung. Zuchten mit häufigerem Wechsel im Tierbestand (76,0 %) waren ­signifikant stärker mit T. benhamiae infiziert als Tiere aus autarken Zuchten (37,1 %) (Berlin et al. 2020). Auch wenn oft beschrieben ist, dass Dermatophyten bei Jungtieren häufiger vorkommen (de Matos und Kalivoda 2013, ESCCAP 2021, Kraemer et al. 2012), konnte dies in dieser Studie bei Meerschweinchen aus Zuchtbeständen nicht bestätigt werden (Berlin et al. 2020).

Bei der Auswertung der 9636 Laboruntersuchungen von Heimtiermeerschweinchen lag die Dermatophyten-Prävalenz bei 3,9 % (382/9636), bei Tieren mit klinischem Verdacht bei 36,9 % (382/1035). T.  benhamiae wurde bei 98,2 % der Tiere mit klinischem Verdacht nachgewiesen (Berlin et al. 2020).

Eine weitere deutsche Studie von 2012 ­untersuchte ebenfalls die Prävalenz von Dermatophyten bei Laboreinsendungen von Heimtiermeerschweinchen mittels kultureller Untersuchung (Kraemer et al. 2012). Bei 38,1 % (431/1132) der Heimtiermeerschweinchen konnten Dermatophyten festgestellt werden, in 91,6 % (395/431) davon T. mentagrophytes. Zusätzlich wurden gesunde Meerschweinchen beprobt: 8,5 % (14/164) waren asymptomatische Träger (Kraemer et al. 2012). Die Prävalenzen beim Heimtiermeerschweinchen sind also annährend gleich hoch geblieben.

Heimtierkaninchen hingegen zeigten in der Laborprobenauswertung von 2012 nur in 8,1 % (83/1021) Dermatophyten, in 72,3 % davon (60/83) T. menta­grophytes. Asymptomatische Träger bei gesunden Kaninchen gab es in dieser Studie nicht (0/140) (Kraemer et al. 2012). In einer belgischen Studie waren 3,8 % (4/104) der Heimtier-, Zucht- und Laborkaninchen asymptomatische Träger (Vangeel et al. 2000). In der deutschen Studie waren Kaninchen mit positiver Pilzkultur jünger als Tiere mit negativer Pilzkultur oder gesunde Tiere (Kraemer et al. 2012).

Bei Igeln werden Dermatophytosen häufig durch T.  erinacei, sehr selten durch M. canis und Nannizzia (N.) gypsea (M. gypseum) verursacht (Pignon und Mayer 2011). Bei klinisch auffälligen Tieren konnte bei 4 von 5 Tieren T. erinacei diagnostiziert ­werden. Asymptomatische Trägertiere sind mit 11,5 % (47/408) beschrieben (Pignon und Mayer 2011).

Dermatophyten kommen bei Meerschweinchen häufig, bei Kaninchen selten vor. Meerschweinchen aus Zoohandlungen (bis 90 %) und ­privaten Zuchtbeständen (68,8 %) sind deutlich stärker betroffen als ­Heimtiermeerschweinchen (bis 38,1 %). Die Prävalenz bei asymptomati­schen Meerschweinchen variiert je nach ­Haltung zwischen 3,9 % (Heimtiere) und 92,7 % (Zuchtbestände).

Wer überträgt’s?

Dermatophytosen sind Zoonosen! Übertragungen auf den Menschen sind häufig beschrieben. Während der Coronapandemie ist die Zahl von humanen T. benhamiae-Infektionen entsprechend der zunehmenden Haltung von Kleintieren in dem Zeitraum gestiegen (Uhrlaß et al. 2023). Überwiegend sind Kinder und Jugendliche betroffen, was auf einen oft engen Kontakt mit den Haustieren zurückzuführen ist. Gefährlich kann eine Infektion für immunsupprimierte Menschen werden (Nationale Forschungsplattform für Zoonosen 2020).

Die häufigste Quelle für humane Infektionen stellen Meerschweinchen dar (Berlin et al. 2020, Kupsch et al. 2017, Nationale Forschungsplattform für Zoonosen 2020, Nenoff et al. 2014, Uhrlaß et al. 2023).

Aber auch Kaninchen können zu potentiellen Gefahrenquellen werden. In 27,3 % (3/11) der betroffenen Haushalte mit Dermatophyten-positiven Heimtierkaninchen waren die Besitzer, hier v. a. die Kinder, infiziert (Krämer et al. 2012). Auch eine Übertragung von Dermatophyten durch Europäische Igel und Afrikanische Weißbauchigel auf den Menschen kommt vor (Pignon und Mayer 2011, Riley und ­Chomel 2005).

Die Übertragung von Dermatophyten findet direkt und indirekt über mit Sporen kontaminierte Gegenstände, Einstreu, Bürsten und Kämme statt (de Matos und Kalivoda 2013, ESCCAP 2021). Infizierte Frettchen leben oft mit Katzen zusammen (de Matos und Kalivoda 2013). Igel infizieren sich ­vermutlich über direkten Kontakt bei der Mutter oder bei Kämpfen und Balzverhalten, da die Veränderungen oft am Kopf auftreten (Pignon und Mayer 2011). Hohe Tierzahlen auf engem Raum erhöhen den Infektionsdruck (Berlin et al. 2020, de Matos und Kalivoda 2013).
Zur klinischen Manifestation kommt es oftmals bei Immunsuppression bedingt durch Stress, andere Grunderkrankungen, Parasitenbefall, Absetzen im Jungtieralter sowie warmes, feuchtes Klima.
Infektionsbegünstigend sind Verletzungen, Risse in der Haut und erhöhte Hautfeuchtigkeit (Berlin et al. 2020).
Typische klinische Symptome sind kreisrunde Alopezie, abgebrochene Haare, Schuppen, Erytheme, gelbe Krusten, zum Teil Juckreiz (de Matos und Kalivoda 2013). Initial beginnen Dermatophytosen oft am Kopf (Nasenrücken, Augenlidern und Pinnae) (Abbildung. 1). Oftmals kommt es zu sekundärer Pyodermie und zu einer Weiterverteilung auf (Vorder-)Pfoten, Krallenbett und später auf den ganzen Körper (de Matos und Kalivoda 2013). Bei Igeln kommt es oft zu nicht juckenden, schuppigen Läsionen, v.  a. am Kopf und zum Stachelverlust (de Matos und Kalivoda 2013, Pignon und Mayer 2011).

Wie diagnostizieren?

Proben für eine mykologische Diagnostik entnimmt man am besten nach der McKenzie-Hairbrush-Technik (Abbildung. 2). Um die Sensitivität zur erhöhen wird das gesamte Tier, nicht nur die veränderten Hautareale, 1 – 2 Minuten mit einer sterilen Bürste (Zahnbürste, Zytobrush) abgebürstet (Berlin und Gräser 2020). Zusätzlich sollten einige Haare samt Wurzel vom Übergang der veränderten Hautbereiche entnommen und in einer verschließbaren Tüte oder einem Gefäß eingesandt werden.
Mittels mikroskopischer Untersuchung (z. B. Trichogramm) können mikroskopisch Pilzhyphen oder -sporen an und/oder in den Haaren nachgewiesen werden. Ein negativer Befund schließt eine Infektion jedoch nicht aus. Mit Hilfe der Wood’schen Lampe kann nur eine Infektion mit M. canis nachgewiesen werden. Allerdings zeigt sich eine Fluoreszenz nur bei ca. 50 % der Infektionen. Die Fluoreszenz entsteht durch in die Haarfollikel eingelagerte Metaboliten, die während einer Infektion gebildet werden und kann i. d. R. 7 – 14 Tage nach Infektion nachgewiesen werden (Moriello et al. 2017). Falsch positive Ergebnisse können z. B. durch Fusseln, topische Medikamente oder sogar Seifenreste hervorgerufen werden (Moriello et al. 2017).

Der Nachweis mittels mykologischer Kultur erfolgt durch Anzucht auf Spezialnährmedien mit nachfolgender makroskopischer und mikroskopischer Differenzierung. Um eine Überwucherung mit Schimmelpilzen zu vermeiden, ist es sinnvoll, das Fell vor Probenentnahme mit einem alkoholfeuchten Tuch abzustreifen. Zusätzlich werden im Labor Selektivnährmedien verwendet, die das Wachstum von Kontaminanten unterdrücken sollen. Die Dauer der mykologischen Kultur ist unterschiedlich, positive Befunde können oft bereits innerhalb 1 Woche vorliegen. Im negativen Fall wird die Kultur in der Regel 3 – 4 Wochen inkubiert, um ein Wachstum auszuschließen.

Das nationale Konsiliarlabor für Dermatophyten empfiehlt aufgrund der schnelleren Analysedauer von nur 2 – 3 Tagen den Nachweis mittels PCR. Eine Differenzierung der Spezies ist möglich. Da die PCR auch abgestorbene Sporen detektiert, ist eine Therapiekontrolle mittels PCR entsprechend nur nach gründlichem Entfernen der Sporen durch Badetherapie sinnvoll und sollte bei der Interpretation der Ergebnisse bedacht werden. Daher wird zur Therapiekontrolle die Pilzkultur empfohlen (ESCCAP 2009). Die histologische Untersuchung einer Hautbiopsie mittels Spezialfärbung liefert ein Ergebnis ebenfalls innerhalb weniger Tage. Sie ist jedoch nur im positiven Fall beweisend, invasiv und daher kein Diagnostikum der Wahl (Weider 2015).
Welches Verfahren am sensitivsten ist, hängt von der Klinik, der Probenentnahme und der Studie ab. Neuere Untersuchungen zeigten bei sichtbaren Dermatophytenläsionen eine hohe Sensitivität der Mikroskopie gefolgt von der PCR (Gnat et al. 2022). Bei asymptomatischen Tieren ist meist die PCR überlegen (Berlin und Gräser 2020, Nikaein et al. 2023). In der neusten Fachliteratur wird allerdings empfohlen, für ein sicheres Ergebnis PCR und Kultur zu kombinieren (Frost et al. 2022).

Therapie

Die Therapie von Dermatophytosen sollte nach aktueller ESCCAP-Empfehlung erfolgen (Kombination von systemischer [Itraconazol] und Badetherapie [Enilconazol 2 × wöchentlich]) (Berlin und Gräser 2020, ESCCAP 2009, Hein 2016, Körnig 2021). Die Badelösung wird nicht ausgewaschen. Um vor Unterkühlung zu schützen, sollten die Tiere nach Waschbehandlungen entsprechend in ein Handtuch gewickelt werden. Eine alleinige lokale Behandlung betroffener Hautstellen ist wegen des hohen Zoonoserisikos, das auch von asymptomatischen Tieren ausgeht, strikt abzulehnen (Berlin und Gräser 2020, ESCCAP 2009, Hein 2016, Körnig 2021).

Alle Tiere im Bestand sind unabhängig vom klinischen Bild zu behandeln! Die Therapie endet optimalerweise nach 2 negativen Kontrollen. Eine Umgebungsbehandlung (Käfig, Häuschen, Pflege­utensilien, Kleidung etc.) parallel zu den Badebehandlungen ist zwingend notwendig. Schlecht zu desinfizierende Käfigeinrichtung sollte für den Zeitraum der Therapie gegen Pappkartons etc. ausgetauscht werden.

Eine Testung vor Einbringen neuer Tiere in den Bestand ist besonders bei den häufig subklinisch infizierten Meerschweinchen indiziert (ESCCAP 2009).

Fazit

Dermatophyten können bei fast allen Kleinsäugern vorkommen, sind jedoch nur beim Meerschweinchen und Igel häufig. Da gerade asymptomatische Meerschweinchen Hauptüberträger für humane Infektionen v. a. bei Kindern sind, sollte bei Neukauf getestet werden. Eigenschutz ist wichtig und darf nicht vernachlässigt werden.

Jana Liebscher, Dr. Jutta Hein