{"id":1648031,"date":"2026-10-29T14:07:24","date_gmt":"2026-10-29T13:07:24","guid":{"rendered":"https:\/\/laboklin.de\/?p=1648031"},"modified":"2026-10-31T20:07:57","modified_gmt":"2026-10-31T19:07:57","slug":"ueberblick-zur-diagnostik-der-aspergillose-beim-vogel","status":"publish","type":"post","link":"https:\/\/laboklin.de\/de\/ueberblick-zur-diagnostik-der-aspergillose-beim-vogel\/","title":{"rendered":"\u00dcberblick zur Diagnostik der Aspergillose beim Vogel"},"content":{"rendered":"<div class=\"wpb-content-wrapper\" id=\"wpb-content-root\"><p>[vc_row][vc_column width=&#8220;2\/3&#8243;][vc_column_text]In dieser Ausgabe m\u00f6chten wir Ihnen ein Update zur Diagnostik der Aspergillose beim Vogel geben, da wir in den letzten Jahren in verschiedenen Studien eine Reihe von neuen Erkenntnissen sammeln konnten.<\/p>\n<p>Die Infektion mit verschiedenen <em>Aspergillus <\/em>spp., vor allem <em>Aspergillus fumigatus<\/em>, stellt immer noch ein h\u00e4ufiges Problem bei verschiedenen Vogelarten wie Psittaciden (z. B. Graupapageien (Abb. 1), Amazonen), Beizv\u00f6geln (z. B. Falken) oder exotischen Arten wie Pinguinen dar. Studien zeigen aber, dass diese Erkrankung nicht nur bei in menschlicher Obhut gehaltenen V\u00f6geln eine Rolle spielt, sondern auch in freier Wildbahn vorkommt. Dabei variieren die Infektionsraten sehr stark je nach Vogelart, Region, Saison sowie Umgebungstemperatur und -feuchtigkeit. In der Haltung spielen zus\u00e4tzliche Faktoren wie Luftqualit\u00e4t, Hygienemanagement, Bodengrund, Futter und F\u00fctterungsmanagement, antibiotische Behandlung etc. eine Rolle. So konnten wir bei laborinternen Auswertungen feststellen, dass die Nachweisraten f\u00fcr Aspergillus-Antik\u00f6rper im Winter deutlich h\u00f6her ausfielen als im Sommer. Eine Erkl\u00e4rung daf\u00fcr k\u00f6nnte sein, dass tropische Arten, wie z. B. viele Papageienspezies, im Winter aufgrund der tiefen Temperaturen eher in beheizten Innenr\u00e4umen mit weniger Frischluftzirkulation gehalten werden. Dadurch scheinen sie st\u00e4rkeren Kontakt zu Pilzsporen zu haben und bilden entsprechend vermehrt Antik\u00f6rper aus. Aufgrund dieser labormedizinischen Ergebnisse k\u00f6nnen wir aber lediglich einen h\u00f6heren Kontakt der Tiere mit dem Pilz im Winter nachweisen, nicht jedoch, ob es auch vermehrt zu klinischen Symptomen und Erkrankungen in diesem Zeitraum kommt. Neben der Umgebung stellt auch das Futter eine Eintragsquelle von Pilzsporen dar, hier vor allem ungesch\u00e4lte Erdn\u00fcsse, aber auch andere S\u00e4mereien k\u00f6nnen potentiell belastet sein.<\/p>\n<h2>Diagnostische M\u00f6glichkeiten<\/h2>\n<p>Die fr\u00fchzeitige Diagnose der Aspergillose beim Vogel ist immer noch eine Herausforderung. Bisher werden in der Regel die folgenden diagnostischen M\u00f6glichkeiten genutzt:<\/p>\n<ul>\n<li>Bildgebung (R\u00f6ntgen (Abb. 2), Endoskopie, CT, MRT)<\/li>\n<li>unspezifischer Nachweis im Labor (H\u00e4matologie, klinische Chemie, Akute-Phase-Proteine, Plasma-elektrophorese, \u03b2-Hydroxybutters\u00e4ure, Metabolom- und zellfreie DNA-Analyse (cell-free DNA)<\/li>\n<li>spezifischer Nachweis im Labor (Galactomannan (Antigen-Nachweis) Aspergillus-Antik\u00f6rper, mykologische Kultur, PCR, Histologie, Zytologie)<\/li>\n<\/ul>\n<p>Um zu ermitteln, welche labordiagnostischen Tests zu welchem Zeitpunkt der Erkrankung am besten geeignet sind, haben wir zusammen mit einer gro\u00dfen Fachpraxis f\u00fcr V\u00f6gel in Deutschland im Rahmen der Routinediagnostik Daten der Befunde ausgewertet. Als Grundlage f\u00fcr die Einstufung dienten die klinische Untersuchung, das R\u00f6ntgen (Abb. 2) und die Endoskopie der V\u00f6gel. Da Graupapageien (<em>Psittacus erithacus<\/em>) in Deutschland h\u00e4ufig gehalten werden und vergleichsweise h\u00e4ufig von Aspergillose betroffen sind, wurden sie als Modellspezies ausgew\u00e4hlt. Die Ergebnisse unserer Untersuchung werden im Folgenden dargestellt.[\/vc_column_text][\/vc_column][vc_column width=&#8220;1\/3&#8243;][vc_column_text]<\/p>\n\n\t\t\t<style type='text\/css'>\n\t\t\t\t#gallery-1 {\n\t\t\t\t\tmargin: auto;\n\t\t\t\t}\n\t\t\t\t#gallery-1 .gallery-item {\n\t\t\t\t\tfloat: left;\n\t\t\t\t\tmargin-top: 10px;\n\t\t\t\t\ttext-align: center;\n\t\t\t\t\twidth: 100%;\n\t\t\t\t}\n\t\t\t\t#gallery-1 img {\n\t\t\t\t\tborder: 2px solid #cfcfcf;\n\t\t\t\t}\n\t\t\t\t#gallery-1 .gallery-caption {\n\t\t\t\t\tmargin-left: 0;\n\t\t\t\t}\n\t\t\t\t\/* see gallery_shortcode() in wp-includes\/media.php *\/\n\t\t\t<\/style>\n\t\t<div id='gallery-1' class='dt-gallery-container gallery galleryid-1648031 gallery-columns-1 gallery-size-full'><dl class='gallery-item'>\n\t\t\t\t<dt class='gallery-icon landscape'>\n\t\t\t\t\t<a class=\"rollover rollover-zoom dt-pswp-item\" title=\"\" data-dt-img-description=\"LABOklin aktuell V\u00f6gel | &lt;b&gt;Abb. 1:&lt;\/b&gt; Graupapageien &lt;i&gt;(Psittacus erithacus)&lt;\/i&gt;&lt;br&gt;\t&lt;i&gt;Bildquelle: Adobe Stock&lt;\/i&gt;\" data-large_image_width=\"1200\" data-large_image_height=\"800\"href='https:\/\/laboklin.de\/wp-content\/uploads\/2026\/10\/graupapageien-psittacus-erithacus.jpg'><img loading=\"lazy\" decoding=\"async\" width=\"1200\" height=\"800\" src=\"https:\/\/laboklin.de\/wp-content\/uploads\/2026\/10\/graupapageien-psittacus-erithacus.jpg\" class=\"attachment-full size-full\" alt=\"graupapageien psittacus erithacus\" aria-describedby=\"gallery-1-1648035\" srcset=\"https:\/\/laboklin.de\/wp-content\/uploads\/2026\/10\/graupapageien-psittacus-erithacus.jpg 1200w, https:\/\/laboklin.de\/wp-content\/uploads\/2026\/10\/graupapageien-psittacus-erithacus-300x200.jpg 300w, https:\/\/laboklin.de\/wp-content\/uploads\/2026\/10\/graupapageien-psittacus-erithacus-1024x683.jpg 1024w, https:\/\/laboklin.de\/wp-content\/uploads\/2026\/10\/graupapageien-psittacus-erithacus-768x512.jpg 768w\" sizes=\"auto, (max-width: 1200px) 100vw, 1200px\" \/><\/a>\n\t\t\t\t<\/dt>\n\t\t\t\t\t<dd class='wp-caption-text gallery-caption' id='gallery-1-1648035'>\n\t\t\t\t\t<b>Abb. 1:<\/b> Graupapageien <i>(Psittacus erithacus)<\/i><br>\t<i>Bildquelle: Adobe Stock<\/i>\n\t\t\t\t\t<\/dd><\/dl><br style=\"clear: both\" \/><dl class='gallery-item'>\n\t\t\t\t<dt class='gallery-icon portrait'>\n\t\t\t\t\t<a class=\"rollover rollover-zoom dt-pswp-item\" title=\"\" data-dt-img-description=\"LABOklin aktuell V\u00f6gel | &lt;b&gt;Abb. 2:&lt;\/b&gt;  Latero-laterales R\u00f6ntgenbild eines Graupapageien &lt;i&gt;(Psittacus erithacus)&lt;\/i&gt; mit Aspergillose&lt;br&gt;\t&lt;i&gt;Bildquelle: Christoph Leineweber&lt;\/i&gt;\" data-large_image_width=\"900\" data-large_image_height=\"1248\"href='https:\/\/laboklin.de\/wp-content\/uploads\/2026\/10\/latero-laterales-roentgenbild-eines-graupapageien.jpg'><img loading=\"lazy\" decoding=\"async\" width=\"900\" height=\"1248\" src=\"https:\/\/laboklin.de\/wp-content\/uploads\/2026\/10\/latero-laterales-roentgenbild-eines-graupapageien.jpg\" class=\"attachment-full size-full\" alt=\"latero laterales r\u00f6ntgenbild eines graupapageien\" aria-describedby=\"gallery-1-1648033\" srcset=\"https:\/\/laboklin.de\/wp-content\/uploads\/2026\/10\/latero-laterales-roentgenbild-eines-graupapageien.jpg 900w, https:\/\/laboklin.de\/wp-content\/uploads\/2026\/10\/latero-laterales-roentgenbild-eines-graupapageien-216x300.jpg 216w, https:\/\/laboklin.de\/wp-content\/uploads\/2026\/10\/latero-laterales-roentgenbild-eines-graupapageien-738x1024.jpg 738w, https:\/\/laboklin.de\/wp-content\/uploads\/2026\/10\/latero-laterales-roentgenbild-eines-graupapageien-768x1065.jpg 768w\" sizes=\"auto, (max-width: 900px) 100vw, 900px\" \/><\/a>\n\t\t\t\t<\/dt>\n\t\t\t\t\t<dd class='wp-caption-text gallery-caption' id='gallery-1-1648033'>\n\t\t\t\t\t<b>Abb. 2:<\/b>  Latero-laterales R\u00f6ntgenbild eines Graupapageien <i>(Psittacus erithacus)<\/i> mit Aspergillose<br>\t<i>Bildquelle: Christoph Leineweber<\/i>\n\t\t\t\t\t<\/dd><\/dl><br style=\"clear: both\" \/><dl class='gallery-item'>\n\t\t\t\t<dt class='gallery-icon landscape'>\n\t\t\t\t\t<a class=\"rollover rollover-zoom dt-pswp-item\" title=\"\" data-dt-img-description=\"LABOklin aktuell V\u00f6gel | &lt;b&gt;Abb. 3:&lt;\/b&gt; &lt;i&gt;Aspergillus&lt;\/i&gt; spp. in Kultur&lt;br&gt;\t&lt;i&gt;Bildquelle: LABOklin&lt;\/i&gt;\" data-large_image_width=\"1200\" data-large_image_height=\"800\"href='https:\/\/laboklin.de\/wp-content\/uploads\/2026\/10\/aspergillus-spp.-in-kultur.jpg'><img loading=\"lazy\" decoding=\"async\" width=\"1200\" height=\"800\" src=\"https:\/\/laboklin.de\/wp-content\/uploads\/2026\/10\/aspergillus-spp.-in-kultur.jpg\" class=\"attachment-full size-full\" alt=\"aspergillus spp. in kultur\" aria-describedby=\"gallery-1-1648034\" srcset=\"https:\/\/laboklin.de\/wp-content\/uploads\/2026\/10\/aspergillus-spp.-in-kultur.jpg 1200w, https:\/\/laboklin.de\/wp-content\/uploads\/2026\/10\/aspergillus-spp.-in-kultur-300x200.jpg 300w, https:\/\/laboklin.de\/wp-content\/uploads\/2026\/10\/aspergillus-spp.-in-kultur-1024x683.jpg 1024w, https:\/\/laboklin.de\/wp-content\/uploads\/2026\/10\/aspergillus-spp.-in-kultur-768x512.jpg 768w\" sizes=\"auto, (max-width: 1200px) 100vw, 1200px\" \/><\/a>\n\t\t\t\t<\/dt>\n\t\t\t\t\t<dd class='wp-caption-text gallery-caption' id='gallery-1-1648034'>\n\t\t\t\t\t<b>Abb. 3:<\/b> <i>Aspergillus<\/i> spp. in Kultur<br>\t<i>Bildquelle: LABOklin<\/i>\n\t\t\t\t\t<\/dd><\/dl><br style=\"clear: both\" \/>\n\t\t\t<\/div>\n\n<p>[\/vc_column_text][\/vc_column][\/vc_row][vc_row][vc_column css=&#8220;.vc_custom_1752749563424{margin-top: 10px !important;}&#8220;][vc_column_text]<\/p>\n<h2>H\u00e4matologie<\/h2>\n<p>Interessant war, dass Tiere mit Aspergillose dazu neigten, h\u00f6here H\u00e4matokrit- und H\u00e4moglobinwerte zu zeigen. Grund daf\u00fcr war ein Abfall der Sauerstoffs\u00e4ttigung und ein Anstieg des Kohlendioxidpartialdrucks. Besonders auff\u00e4llig waren diese Ver\u00e4nderungen bei den Papageien, die auch klinische Symptome zeigten. Das wei\u00dfe Blutbild zeigte eine Leukozytose, vor allem bei den V\u00f6geln mit chronischer Aspergillose und nachweisbaren Granulomen in den Lufts\u00e4cken. Insgesamt kam es bei den erkrankten Tieren zu einer Erh\u00f6hung der Heterophilen und einem Absinken der Lymphozyten im Blut. Tiere mit akuter Aspergillose und klinischen Symptomen hatten h\u00e4ufiger erh\u00f6hte Monozyten und Eosinophile im Blutausstrich.<\/p>\n<h2>Klinische Chemie und Akute-Phase-Proteine<\/h2>\n<p>Eine Aspergillus-Infektion kann neben dem Respirationstrakt viele weitere innere Organe direkt oder indirekt sch\u00e4digen, letzteres durch die toxischen Stoffwechselprodukte des Pilzes. Es empfiehlt sich daher bei der diagnostischen Aufarbeitung einer Aspergillose ein umfassendes klinisch-chemisches Organprofil untersuchen zu lassen. Dieses sollte die leberassoziierten Enzyme (Glutamatdehydrogenase (GLDH), Aspartat-Aminotransferase (AST), Lactat-dehydrogenase (LDH), Gamma-Glutamyltransferase (GGT)), Gallens\u00e4uren sowie Nierenwerte wie Harns\u00e4ure, Calcium, Phosphat und Elektrolyte enthalten. Dies hat auch im Therapieverlauf eine gro\u00dfe Bedeutung zur Erkennung von medikament\u00f6sen Nebenwirkungen. Akute-Phase-Proteine, insbesondere Serum Amyloid A (SAA) und Haptoglobin, wurden beim Vogel bereits in verschiedensten Studien untersucht, unter anderem auch im Zusammenhang mit Aspergillose. Die Ergebnisse variieren jedoch sowohl zwischen den einzelnen Studien als auch zwischen den untersuchten Vogelarten.<\/p>\n<h2>Plasmaproteinelektrophorese<\/h2>\n<p>Erg\u00e4nzend zur H\u00e4matologie und Blutchemie bietet die Plasmaproteinelektrophorese eine gute M\u00f6glichkeit, um entz\u00fcndliche Prozesse im K\u00f6rper nachzuweisen. Es wurden bereits einige Studien bei verschiedenen Vogelarten durchgef\u00fchrt, die gezeigt haben, dass auch die Aspergillose zu signifikanten Ver\u00e4nderungen der Plasmaproteinzusammensetzung f\u00fchren kann. Man muss jedoch beachten, dass die Ver\u00e4nderungen der aufgetrennten Proteinfraktionen je nach Vogelart und in Abh\u00e4ngigkeit der verwendeten Elektrophoresetechnik variieren. Bei der Auswertung m\u00fcssen daher vogelart- und methodenspezifische Referenzwerte verwendet werden. In unserer Studienpopulation zeigte sich bei den Graupapageien mit Aspergillus-Infektion ein Anstieg im Gesamteiwei\u00df, bedingt durch den Anstieg der Globuline. Albumin als negatives Akute-Phase-Protein war hingegen erniedrigt, sodass es zu einem erniedrigten Albumin\/Globulin-Quotienten kam.<\/p>\n<p>Bei den Tieren mit chronischer Aspergillose und Granulomen in den Lufts\u00e4cken waren besonders die \u03b2-Globuline erh\u00f6ht, w\u00e4hrend bei den Tieren mit akuter Aspergillose und klinischen Symptomen die \u03b1- und \u03b3-Globuline anstiegen. Viele weitere Studien bei anderen Vogelarten zeigten auch, dass vor allem die \u03b1-Globuline bei einer Aspergillose ansteigen.<\/p>\n<h2>\u03b2-Hydroxybutters\u00e4ure, Metabolom und zellfreie DNA<\/h2>\n<p>Es werden kontinuierlich neue Studien mit der Bestrebung durchgef\u00fchrt, weitere potentielle Marker zum fr\u00fcheren und gezielteren Nachweis der Asper-gillose beim Vogel zu finden. So konnten Studien bei Brillenpinguinen (<em>Spheniscus demersus<\/em>) und Falken (<em>Falco <\/em>spp.) zeigen, dass sich auch die \u03b2-Hydroxybutters\u00e4ure (\u03b2-HBS) eignet, um aspergillosebedingte Stoffwechselver\u00e4nderungen anzuzeigen: Eine Erh\u00f6hung der \u03b2-HBS weist auf einen katabolen Stoffwechsel hin. Bei den infizierten Graupapageien in unserer Studie hingegen gab es keine signifikanten Ver\u00e4nderungen der \u03b2-HBS.<\/p>\n<p>Ein weiterer aktueller Forschungsansatz befasst sich mit der Analyse des Metaboloms und der zellfreien DNA (cell-free DNA) und betrachtet so eine Vielzahl von Zell- und Stoffwechselver\u00e4nderungen und wie diese sich durch eine Infektion mit <em>Aspergillus <\/em>spp. ver\u00e4ndern. Auch hier waren wir an einer Studie in Zusammenarbeit mit dem Zoo Kopenhagen und weiteren Kolleginnen und Kollegen aus D\u00e4nemark beteiligt (Drag et al. 2026).<\/p>\n<h2>Aspergillus-Antik\u00f6rper<\/h2>\n<p>Doch wie gut eignen sich die bereits etablierten spezifischen diagnostischen Verfahren f\u00fcr den Nachweis einer Aspergillose? Die Aspergillus-Antik\u00f6rper zeigen einen Kontakt mit dem Pilz an, der nicht immer im Zusammenhang mit einer klinischen Erkrankung stehen muss. Das konnten wir auch bei den Graupapageien aus unserer Studie nachweisen, da auch klinisch gesunde und in der Endoskopie unauff\u00e4llige V\u00f6gel Aspergillus-Antik\u00f6rper aufwiesen, zum Teil sogar in hohen Titerstufen. Die Tiere mit akuter Aspergillose und klinischen Symptomen<\/p>\n<p>zeigten alle niedrige Titer, da hier die Antik\u00f6rperbildung gegen den Pilz erst einsetzte. Interessant ist jedoch, dass bei fast 50 % der Tiere mit chronischer Aspergillose und nachweisbaren Granulomen keine Antik\u00f6rper im Blut nachgewiesen werden konnten. Daraus ergibt sich die Frage, wie das Immunsystem auf Erreger wie Aspergillus reagiert und wie lange die Antik\u00f6rper im Blut der V\u00f6gel zirkulieren und nachweisbar sind.<\/p>\n<h2>Galactomannan<\/h2>\n<p>Beim Verdacht auf eine akute Aspergillose wird anstelle des Aspergillus-Antik\u00f6rpernachweises eher zum Nachweis von Galactomannan, einem Polysaccharid aus der Zellwand verschiedener <em>Aspergillus <\/em>spp., zum Direktnachweis der Infektion geraten. Die akut infizierten Graupapageien wie-sen deutlich erh\u00f6hte Werte im Blut auf, w\u00e4hrend bei den chronischen F\u00e4llen kein Nachweis gelang. Grund daf\u00fcr ist, dass Galactomannan vom Pilz freigesetzt werden muss, um im Blut des Patienten nachweisbar zu sein. Dies kann im weiteren Verlauf der Erkrankung nicht mehr erfolgen, da der Pilz vom Immunsystem des Wirts in Granulomen abgekapselt und meist abget\u00f6tet wird. Der Grad der Durchblutung des Infektionsherdes spielt ebenfalls eine gro\u00dfe Rolle bei dessen labormedizinischer Nachweisbarkeit: So k\u00f6nnen beispielsweise feine, kleine Ver\u00e4nderungen in den Lufts\u00e4cken negativ im Galactomannan-Test ausfallen. Eine Infektion im Schnabel- oder Nasenbereich ist au\u00dferdem beschrieben und gibt nicht immer nachweisbare Mengen an Galactomannan ins Blut ab. Solche Aspergillosen sind sowohl mittels Bildgebung als auch aus Laborsicht nur schwer zu diagnostizieren.<\/p>\n<p>In der Veterin\u00e4rmedizin wird Galactomannan routinem\u00e4\u00dfig aus Serum nachgewiesen. In der Humanmedizin hat sich jedoch gezeigt, dass die Bestimmung von Galactomannan aus einer bronchoalveol\u00e4ren Lavage (BAL) deutlich sensitiver ist als der Nachweis im Serum. In der Vogelmedizin k\u00f6nnte man analog dazu Sp\u00fclproben aus den Lufts\u00e4cken analysieren. Dies ist aber sehr aufwendig und bislang gibt es hierzu noch keine Erfahrungswerte.<\/p>\n<h2>Kultur, PCR, Histologie<\/h2>\n<p>In diesem Zusammenhang m\u00f6chten wir auch kurz auf den Direktnachweis mittels mykologischer Kultur (Abb. 3) eingehen.<\/p>\n<p>Eine Anzucht aus Rachen- und Choanentupfern ist prinzipiell m\u00f6glich, die Interpretation des Ergebnisses ist jedoch problematisch: Eine Abgrenzung zwischen einer Infektion mit dem Pilz, die zu einer klinischen Erkrankung gef\u00fchrt hat, und dem Nachweis erst k\u00fcrzlich aus der Umgebung inhalierter Sporen ist h\u00e4ufig schwierig. Die Untersuchung von Probenmaterial, welches z. B. w\u00e4hrend der Endoskopie entnommen wurde, ist hierf\u00fcr in der Regel deutlich besser geeignet. Granulome, die aus den Lufts\u00e4cken oder anderen Lokalisationen entfernt wurden, k\u00f6nnen zur Diagnosebest\u00e4tigung beitragen, wobei der Pilz in den Granulomen h\u00e4ufig abget\u00f6tet und nicht mehr anz\u00fcchtbar ist. Daher sollten Granulome immer auch histologisch untersucht werden, um Pilzhyphen und typische Entz\u00fcndungsreaktionen darzustellen.<\/p>\n<p>Einen weiteren Direktnachweis stellt die PCR (Polymerase-Kettenreaktion) zum Nachweis von Erreger-DNA dar. In der Humanmedizin wird diese zum Teil aus Blutserum durchgef\u00fchrt, analog zum Nachweis von Galactomannan. In der tiermedizinischen Forschung wurde bereits der Einsatz einer PCR bei verschiedenen Tierarten untersucht, in der Routinediagnostik ist diese Methode jedoch noch nicht verbreitet.<\/p>\n<h2>Fazit<\/h2>\n<p>Die Aspergillose ist nach wie vor eine relevante Erkrankung vieler Vogelspezies, die diagnostische Stolpersteine parat h\u00e4lt. Nur eine gezielte Kombination aus Anamnese, Klinik, Bildgebung und Labordiagnostik kann die Infektion und ihre Folgen aufdecken. Dabei ist keine einzelne Nachweismethode f\u00fcr alle Stadien bzw. Lokalisationen der Infektion gleicherma\u00dfen geeignet. Es wird viel zum verbesserten Nachweis geforscht, jedoch behalten die etablierten Nachweisverfahren (Serologie, Galactomannan, Histologie) und die Basis-Laboruntersuchungen (H\u00e4matologie, klinische Chemie inkl. Plasmaproteinelektrophorese) ihre Bedeutung. In der Zukunft werden neue Parameter mehr und mehr unseren diagnostischen Horizont erweitern.<\/p>\n<p style=\"text-align: right;\"><em>Christoph Leineweber<\/em><\/p>\n<p style=\"text-align: left;\"><strong>Leistungen<\/strong> <strong>zum<\/strong> <strong>Thema<\/strong><\/p>\n<blockquote>\n<ul>\n<li>Aspergillus-Galactomannan aus Serum<\/li>\n<li>Aspergillus-Antik\u00f6rper<\/li>\n<li>mykologische Kultur<\/li>\n<li>Serumproteinelektrophorese<\/li>\n<li>H\u00e4matologie inkl. manuelle Differenzierung<\/li>\n<li>Vogel-Screening<\/li>\n<li>\u03b2-Hydroxybutters\u00e4ure (\u03b2-HBS)<\/li>\n<li>Einzelparameter der klinischen Chemie<\/li>\n<\/ul>\n<\/blockquote>\n<p>[\/vc_column_text][\/vc_column][\/vc_row][vc_row type=&#8220;vc_default&#8220; gap=&#8220;10&#8243; equal_height=&#8220;yes&#8220; css=&#8220;.vc_custom_1713769814380{margin-top: 30px !important;}&#8220;][vc_column][vc_column_text]<\/p>\n<h5><span style=\"color: #000000;\"><strong>Weiterf\u00fchrende<\/strong> <strong>Literatur<\/strong><\/span><\/h5>\n<ul>\n<li>\n<h6><span style=\"color: #808080;\"><strong>Arca-Ruibal B, Wernery U, Zachariah R, Bailey TA, Di Somma A, Silvanose C, McKinney P. Assessment of a commercial sandwich ELISA in the diagnosis of aspergillosis in falcons. Vet Rec. 2006;158(13):442-444.<\/strong><\/span><\/h6>\n<\/li>\n<li>\n<h6><span style=\"color: #808080;\"><strong>Arn\u00e9 P, Risco-Castillo V, Jouvion G, Le Barzic C, Guillot J. Aspergillosis in wild birds. J Fungi (Basel). 2021;7(3):241.<\/strong><\/span><\/h6>\n<\/li>\n<li>\n<h6><span style=\"color: #808080;\"><strong>Beernaert LA, Pasmans F, van Waeyenberghe L, Haesebrouck F, Martel <\/strong><\/span><span style=\"color: #808080;\"><strong>Aspergillus infections in birds: a review. Avian Pathol. 2010;39(5):325-331.<\/strong><\/span><\/h6>\n<\/li>\n<li>\n<h6><span style=\"color: #808080;\"><strong>Cray C, Watson T, Rodriguez M, Arheart KL. Application of galactomannan analysis and protein electrophoresis in the diagnosis of aspergillosis in avian species. J Zoo Wildl Med. 2009;40(1):64-70.<\/strong><\/span><\/h6>\n<\/li>\n<li>\n<h6><span style=\"color: #808080;\"><strong>Cray C, Reavill D, Romagnano A, Van Sant F, Champagne D, Stevenson R, Rolfe V, Griffin C, Clubb S. Galactomannan assay and plasma protein electrophoresis findings in psittacine birds with aspergillosis. J Avian Med Surg. 2009;23(2):125-135.<\/strong><\/span><\/h6>\n<\/li>\n<li>\n<h6><span style=\"color: #808080;\"><strong>Cray C, Watson T, Arheart KL. Serosurvey and diagnostic application of antibody titers to Aspergillus in avian species. Avian Dis. <\/strong><\/span><span style=\"color: #808080;\"><strong>2009;53(4):491-494.<\/strong><\/span><\/h6>\n<\/li>\n<li>\n<h6><span style=\"color: #808080;\"><strong>Desoubeaux G, Rodriguez M, Bronson E, Sirpenski G, Cray C. Application of 3-Hydroxybutyrate measurement and plasma protein electrophoresis in the diagnosis of aspergillosis in African penguins (Spheniscus demersus). J Zoo Wildl Med. 2018;49(3):696-703.<\/strong><\/span><\/h6>\n<\/li>\n<li>\n<h6><span style=\"color: #808080;\"><strong>Drag MH, Hvilsom C, Poulsen LL, Jensen HE, Tahas SA, Leineweber C, Cray C, Bertelsen MF, Bojesen AM. MethylSense: high accuracy <\/strong><\/span><span style=\"color: #808080;\"><strong>machine learning-based diagnostics for Aspergillus fumigatus infection in chickens using host cell-free DNA methylation and Nanopore sequencing. J Clin Microbiol. 2026;64(6):e0105425.<\/strong><\/span><\/h6>\n<\/li>\n<li>\n<h6><span style=\"color: #808080;\"><strong>Pappalardo L, Hoijemberg PA, Pelczer I, Bailey TA. NMR-Metabolomics study on falcons affected by Aspergillosis. Curr Metabolomics. <\/strong><\/span><span style=\"color: #808080;\"><strong>2014;2(2):155-161.<\/strong><\/span><\/h6>\n<\/li>\n<li>\n<h6><span style=\"color: #808080;\"><strong>Savelieff MG, Pappalardo L, Azmanis P. 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