{"id":1454497,"date":"2023-11-24T11:19:30","date_gmt":"2023-11-24T10:19:30","guid":{"rendered":"https:\/\/laboklin.de\/die-qual-der-wahl-erreger-oder-antikoerpernachweis-zur-diagnostik-von-infektionserkrankungen\/"},"modified":"2024-11-07T12:15:54","modified_gmt":"2024-11-07T11:15:54","slug":"die-qual-der-wahl-erreger-oder-antikoerpernachweis-zur-diagnostik-von-infektionserkrankungen","status":"publish","type":"post","link":"https:\/\/laboklin.de\/de-ch\/die-qual-der-wahl-erreger-oder-antikoerpernachweis-zur-diagnostik-von-infektionserkrankungen\/","title":{"rendered":"Die Qual der Wahl: Erreger- oder Antik\u00f6rpernachweis zur Diagnostik von Infektionserkrankungen?"},"content":{"rendered":"<div class=\"wpb-content-wrapper\"><p>[vc_row][vc_column width=&#187;2\/3&#8243;][vc_column_text]F\u00fcr den Nachweis von Infektionserkrankungen steht der Tier\u00e4rztin und dem Tierarzt ein breites \u00adSpektrum an Labortests zur Verf\u00fcgung. Dabei kommt der Auswahl der Untersuchungsmethode eine wichtige Bedeutung zu. Ist ein Antik\u00f6rpernachweis oder ein direkter Erregernachweis aussagekr\u00e4ftiger? Worin unterscheiden sich diese Tests und wann ist welche Nachweismethode besser geeignet? Dieser Artikel soll einen grundlegenden \u00dcberblick liefern, um Krankheitsf\u00e4lle sinnvoll dia\u00adgnostisch aufarbeiten zu k\u00f6nnen.<\/p>\n<p>Labortests zur Diagnostik von Infektionserregern werden im tier\u00e4rztlichen Praxisalltag haupts\u00e4chlich aus 3 Gr\u00fcnden durchgef\u00fchrt:<\/p>\n<ul>\n<li>Nachweis einer infekti\u00f6sen \u00c4tiologie bei akuter oder chronischer klinischer Erkrankung<\/li>\n<li>Nachweis einer Erregerausscheidung bei subklinischer Infektion (Ansteckungspotential vorhanden?)<\/li>\n<li>Nachweis von Infektionsfreiheit (z. B. vor einem Zuchteinsatz oder f\u00fcr Import\/Export)<\/li>\n<\/ul>\n<div><\/div>\n<div>W\u00e4hrend beim <strong>direkten Erregernachweis<\/strong> der \u00adErreger selbst oder z. B. Teile des Genoms oder auch Antigene detektiert werden, weist eine Antik\u00f6rperbestimmung einen vorhergehenden Kontakt und die damit verbundene Immunreaktion des \u00adK\u00f6rpers auf ein Pathogen nach (<strong>indirekter Nachweis<\/strong> einer Infektion). Verschiedenste Laborverfahren stehen zur Verf\u00fcgung, die je nach Testprinzip und Testdesign f\u00fcr den Nachweis von Antik\u00f6rpern und\/oder Erregern Verwendung finden (Tabelle 1).<\/div>\n<p>[\/vc_column_text][\/vc_column][vc_column width=&#187;1\/3&#8243;][vc_column_text css=&#187;&#187;]<\/p>\n\n\t\t\t<style type='text\/css'>\n\t\t\t\t#gallery-1 {\n\t\t\t\t\tmargin: auto;\n\t\t\t\t}\n\t\t\t\t#gallery-1 .gallery-item {\n\t\t\t\t\tfloat: left;\n\t\t\t\t\tmargin-top: 10px;\n\t\t\t\t\ttext-align: center;\n\t\t\t\t\twidth: 100%;\n\t\t\t\t}\n\t\t\t\t#gallery-1 img {\n\t\t\t\t\tborder: 2px solid #cfcfcf;\n\t\t\t\t}\n\t\t\t\t#gallery-1 .gallery-caption {\n\t\t\t\t\tmargin-left: 0;\n\t\t\t\t}\n\t\t\t\t\/* see gallery_shortcode() in wp-includes\/media.php *\/\n\t\t\t<\/style>\n\t\t<div id='gallery-1' class='dt-gallery-container gallery galleryid-1454497 gallery-columns-1 gallery-size-large'><dl class='gallery-item'>\n\t\t\t\t<dt class='gallery-icon landscape'>\n\t\t\t\t\t<a class=\"rollover rollover-zoom dt-pswp-item\" title=\"\" data-dt-img-description=\"LABOKLIN aktuell Pferd | &lt;b&gt;Abb. 1:&lt;\/b&gt; Verlauf von IgM- und IgG-Antik\u00f6rperkonzentrationen im Serum nach einer Infektion &lt;br&gt;&lt;i&gt;Bildquelle: Laboklin&lt;\/i&gt;\" data-large_image_width=\"1300\" data-large_image_height=\"882\"href='https:\/\/laboklin.de\/wp-content\/uploads\/2023\/11\/Verlauf-von-IgM-und-IgG-Antikoerperkonzentrationenim-Serum-nach-einer-Infektion.jpg'><img loading=\"lazy\" decoding=\"async\" width=\"1024\" height=\"695\" src=\"https:\/\/laboklin.de\/wp-content\/uploads\/2023\/11\/Verlauf-von-IgM-und-IgG-Antikoerperkonzentrationenim-Serum-nach-einer-Infektion-1024x695.jpg\" class=\"attachment-large size-large\" alt=\"Abb. 1: Verlauf von IgM- und IgG-Antik\u00f6rperkonzentrationen im Serum nach einer Infektion Bildquelle: Laboklin\" aria-describedby=\"gallery-1-1454464\" srcset=\"https:\/\/laboklin.de\/wp-content\/uploads\/2023\/11\/Verlauf-von-IgM-und-IgG-Antikoerperkonzentrationenim-Serum-nach-einer-Infektion-1024x695.jpg 1024w, https:\/\/laboklin.de\/wp-content\/uploads\/2023\/11\/Verlauf-von-IgM-und-IgG-Antikoerperkonzentrationenim-Serum-nach-einer-Infektion-300x204.jpg 300w, https:\/\/laboklin.de\/wp-content\/uploads\/2023\/11\/Verlauf-von-IgM-und-IgG-Antikoerperkonzentrationenim-Serum-nach-einer-Infektion-768x521.jpg 768w, https:\/\/laboklin.de\/wp-content\/uploads\/2023\/11\/Verlauf-von-IgM-und-IgG-Antikoerperkonzentrationenim-Serum-nach-einer-Infektion.jpg 1300w\" sizes=\"auto, (max-width: 1024px) 100vw, 1024px\" \/><\/a>\n\t\t\t\t<\/dt>\n\t\t\t\t\t<dd class='wp-caption-text gallery-caption' id='gallery-1-1454464'>\n\t\t\t\t\t<b>Abb. 1:<\/b> Verlauf von IgM- und IgG-Antik\u00f6rperkonzentrationen im Serum nach einer Infektion <br><i>Bildquelle: Laboklin<\/i>\n\t\t\t\t\t<\/dd><\/dl><br style=\"clear: both\" \/><dl class='gallery-item'>\n\t\t\t\t<dt class='gallery-icon landscape'>\n\t\t\t\t\t<a class=\"rollover rollover-zoom dt-pswp-item\" title=\"\" data-dt-img-description=\"LABOKLIN aktuell Pferd | &lt;b&gt;Abb. 2:&lt;\/b&gt; Titeranstieg in einem Serumpaar bei Vorliegen einer frischen Infektion &lt;br&gt;&lt;i&gt;Bildquelle: Laboklin&lt;\/i&gt;\" data-large_image_width=\"1300\" data-large_image_height=\"882\"href='https:\/\/laboklin.de\/wp-content\/uploads\/2023\/11\/Titeranstieg-in-einem-Serumpaar-bei-Vorliegen-einer-frischen-Infektion.jpg'><img loading=\"lazy\" decoding=\"async\" width=\"1024\" height=\"695\" src=\"https:\/\/laboklin.de\/wp-content\/uploads\/2023\/11\/Titeranstieg-in-einem-Serumpaar-bei-Vorliegen-einer-frischen-Infektion-1024x695.jpg\" class=\"attachment-large size-large\" alt=\"\" aria-describedby=\"gallery-1-1454447\" srcset=\"https:\/\/laboklin.de\/wp-content\/uploads\/2023\/11\/Titeranstieg-in-einem-Serumpaar-bei-Vorliegen-einer-frischen-Infektion-1024x695.jpg 1024w, https:\/\/laboklin.de\/wp-content\/uploads\/2023\/11\/Titeranstieg-in-einem-Serumpaar-bei-Vorliegen-einer-frischen-Infektion-300x204.jpg 300w, https:\/\/laboklin.de\/wp-content\/uploads\/2023\/11\/Titeranstieg-in-einem-Serumpaar-bei-Vorliegen-einer-frischen-Infektion-768x521.jpg 768w, https:\/\/laboklin.de\/wp-content\/uploads\/2023\/11\/Titeranstieg-in-einem-Serumpaar-bei-Vorliegen-einer-frischen-Infektion.jpg 1300w\" sizes=\"auto, (max-width: 1024px) 100vw, 1024px\" \/><\/a>\n\t\t\t\t<\/dt>\n\t\t\t\t\t<dd class='wp-caption-text gallery-caption' id='gallery-1-1454447'>\n\t\t\t\t\t<b>Abb. 2:<\/b> Titeranstieg in einem Serumpaar bei Vorliegen einer frischen Infektion <br><i>Bildquelle: Laboklin<\/i>\n\t\t\t\t\t<\/dd><\/dl><br style=\"clear: both\" \/>\n\t\t\t<\/div>\n\n<p>[\/vc_column_text][\/vc_column][\/vc_row][vc_row type=&#187;vc_default&#187; css=&#187;.vc_custom_1657177034207{margin-top: 20px !important;}&#187;][vc_column][vc_column_text css=&#187;&#187;]<strong>Tab. 1:<\/strong> Testverfahren zur Infektionserregerdiagnostik und deren Anwendung; <em>Quelle: Laboklin\u00a0<\/em><\/p>\n<table width=\"455\">\n<tbody>\n<tr style=\"color: #ffffff;\" bgcolor=\"e51e1e\">\n<td width=\"284\"><strong>Methode <\/strong><\/td>\n<td style=\"text-align: center;\" width=\"79\"><strong>Erregernachweis<\/strong><\/td>\n<td style=\"text-align: center;\" width=\"91\"><strong>Antik\u00f6rpernachweis<\/strong><\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"284\">\u00a0Mikroskopie\/Elektronenmikroskopie<\/td>\n<td style=\"text-align: center;\" width=\"79\"><strong>X<\/strong><\/td>\n<td width=\"91\"><\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"284\">\u00a0Anzucht<\/td>\n<td style=\"text-align: center;\" width=\"79\"><strong>X<\/strong><\/td>\n<td width=\"91\"><\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"284\">\u00a0Immunhistochemie<\/td>\n<td style=\"text-align: center;\" width=\"79\"><strong>X<\/strong><\/td>\n<td width=\"91\"><\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"284\">\u00a0Polymerase-Kettenreaktion (PCR)<\/td>\n<td style=\"text-align: center;\" width=\"79\"><strong>X<\/strong><\/td>\n<td width=\"91\"><\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"284\">\u00a0Enzyme Linked Immunosorbent Assay (ELISA)<\/td>\n<td style=\"text-align: center;\" width=\"79\"><strong>X<\/strong><\/td>\n<td style=\"text-align: center;\" width=\"91\"><strong>X<\/strong><\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"284\">\u00a0Immunfluoreszenztest (IFAT)<\/td>\n<td style=\"text-align: center;\" width=\"79\"><strong>X<\/strong><\/td>\n<td style=\"text-align: center;\" width=\"91\"><strong>X<\/strong><\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"284\">\u00a0Virusneutralisationstest (VNT)<\/td>\n<td width=\"79\"><\/td>\n<td style=\"text-align: center;\" width=\"91\"><strong>X<\/strong><\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"284\">\u00a0Western Blot (WB)<\/td>\n<td width=\"79\"><\/td>\n<td style=\"text-align: center;\" width=\"91\"><strong>X<\/strong><\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"284\">\u00a0Lateral Flow Tests<\/td>\n<td style=\"text-align: center;\" width=\"79\"><strong>X<\/strong><\/td>\n<td style=\"text-align: center;\" width=\"91\"><strong>X<\/strong><\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"284\">\u00a0u.a.<\/td>\n<td width=\"79\"><\/td>\n<td width=\"91\"><\/td>\n<\/tr>\n<\/tbody>\n<\/table>\n<p>Unterschiedliche Testmethoden k\u00f6nnen zu unterschiedlichen Ergebnissen f\u00fchren. Sie unterscheiden sich teilweise sehr in ihrer Sensitivit\u00e4t und Spezifit\u00e4t. Kein Testverfahren weist eine 100%ige Sensitivit\u00e4t und Spezifit\u00e4t auf. Die Kombination von mehreren Tests kann sich in vielen F\u00e4llen als hilfreich erweisen.<\/p>\n<h2>Erregernachweise<\/h2>\n<p>Das Spektrum der Verfahren f\u00fcr einen <strong>direkten Erregernachweis<\/strong> ist breit gef\u00e4chert: angefangen bei der Mikroskopie, \u00fcber Schnelltests, Immun\u00adfluoreszenztests und Enzym-Immunoassays, welche Antigene des Pathogens detektieren, bis hin zur Polymerase-Kettenreaktion (Nachweis von Genomsequenzen) und kulturellen Anzucht. Es kann zwischen gezielten und ungezielten Nachweisverfahren unterschieden werden.<\/p>\n<div>\n<p>Die Auswahl des Probenmaterials ist f\u00fcr einen Erregernachweis von entscheidender Bedeutung und abh\u00e4ngig davon, wo der gesuchte Erreger zum Zeitpunkt der Probennahme zu erwarten ist. Je nach Infektionskrankheit und Testmethode k\u00f6nnen verschiedenste Materialien in Frage kommen: Blut, Abstriche, Faeces, Harn, Punktate, Gewebe, Hautgeschabsel, Haare, etc. Welches Probenmaterial im Einzelfall geeignet ist, h\u00e4ngt von \u00adverschiedenen Faktoren ab. Kenntnisse zur Pathogenese der \u00adErkrankung, v. a. zu Zielorganen und Ausscheidung des Erregers, sind essentiell. Aber auch die Phase der Infektion, in der sich der Patient zum Zeitpunkt der Probenentnahme befindet, sowie Alter, Immunstatus und Impfstatus des Patienten k\u00f6nnen eine Rolle spielen.<\/p>\n<h2>Pr\u00e4analytik<\/h2>\n<p>Wichtig f\u00fcr die Pr\u00e4analytik ist die Frage, ob die Erreger f\u00fcr die gew\u00e4hlte Nachweismethode vermehrungsf\u00e4hig sein m\u00fcssen oder nicht. Davon h\u00e4ngt z. B. ab, ob die Durchf\u00fchrung des Tests zeitkritisch ist, also zeitnah erfolgen muss, oder ob spezielle Transportmedien notwendig sind. Das ist v. a. bei kulturellen Testverfahren der Fall. Die jeweiligen Hinweise des Labors zur Pr\u00e4analytik sollten stets Beachtung finden, um aussagekr\u00e4ftige \u00adErgebnisse zu erhalten. F\u00fcr PCR-Untersuchungen sind \u00adAbstriche ohne Transportmedium, EDTA-Blut, Fl\u00fcssigkeiten in sterilen, unbeschichteten R\u00f6hrchen sowie unfixiertes Gewebe geeignet.<\/p>\n<\/div>\n<div><\/div>\n<div>Eine Probenentnahme sollte in den meisten F\u00e4llen fr\u00fchzeitig und wann immer m\u00f6glich vor Therapiebeginn erfolgen.<\/div>\n<div><\/div>\n<div>\n<p>W\u00e4hrend ein negatives Testergebnis eine Infektion niemals mit vollst\u00e4ndiger Sicherheit ausschlie\u00dfen kann, best\u00e4tigt ein positives Ergebnis zwar das Vorhandensein des Erregers im Probenmaterial, aber nicht zwingend einen \u00e4tiologischen Zusammenhang mit der klinischen Erkrankung. Besonders bei sehr sensitiven Testmethoden muss die Befundinterpretation sorgf\u00e4ltig erfolgen. Die Vermehrungsf\u00e4higkeit und damit letztlich die Infektiosit\u00e4t eines Erregers kann nur in kulturellen Verfahren nachgewiesen werden.<\/p>\n<h2>Antik\u00f6rpernachweis<\/h2>\n<p>Antik\u00f6rper im Serum k\u00f6nnen unterschiedlicher \u00adHerkunft sein:<\/p>\n<ul>\n<li>Maternale Antik\u00f6rper: Sie k\u00f6nnen bei Fohlen bis zu einem Alter von etwa 6 \u2013 8 Wochen (selten bis zu 6 Monaten) vorhanden sein. Das ist bei der Interpretation positiver Antik\u00f6rperbefunde in dieser Altersklasse zu beachten.<\/li>\n<li>Impfung: In der Regel ist keine direkte Unterscheidung zwischen Impf- und Infektionsantik\u00f6rpern m\u00f6glich (Ausnahme: sog. Marker-Impfstoffe).<\/li>\n<li>Infektion: Antik\u00f6rperspiegel persistieren meist f\u00fcr einen langen Zeitraum nach der Infektion.<\/li>\n<\/ul>\n<p>Bis das Immunsystem nach einem Erregerkontakt (Impfung oder Infektion) spezifische Antik\u00f6rper ausgebildet hat, vergeht eine gewisse Zeit. <strong>IgM-\u00adAntik\u00f6rper<\/strong> erscheinen als erste Immunglobulin-Subgruppe im Blut und sind abh\u00e4ngig von Pathogen und Immunstatus des Patienten, nach etwa 1 \u2013 2 Wochen post infectionem nachweisbar. <strong>IgG-Antik\u00f6rper<\/strong> sind beim Pferd nach ca. 3 Wochen zu finden und persistieren in der Regel \u00fcber einen l\u00e4ngeren Zeitraum (Abbildung 1). Bei bestimmten Erregern k\u00f6nnen diese Zeitangaben variieren, manche Erreger induzieren nur in sehr geringem Ma\u00df eine Antik\u00f6rperbildung (z. B. Mykoplasmen).<br \/>\nEin positiver Antik\u00f6rpertest ist also erst nach einiger Zeit zu erwarten. Bei akuten oder perakuten Krankheitsverl\u00e4ufen sind daher h\u00e4ufig noch keine Antik\u00f6rper messbar. Besonders bei viralen Infektionen ist meist nur ein retrospektiver Nachweis m\u00f6glich.<\/p>\n<\/div>\n<div>\n<p>F\u00fcr einige Pathogene (z. B. West Nile Virus, FSME-Virus und Borrelien) besteht die M\u00f6glichkeit, sowohl IgM- als auch IgG-Antik\u00f6rper zu messen. Da diese zu unterschiedlichen Zeitpunkten im Verlauf der Infektion vorhanden sind, l\u00e4sst sich durch deren zeitgleiche Bestimmung absch\u00e4tzen, ob es sich um eine frische Infektion handelt (IgM-Antik\u00f6rper \u2191) oder ob die Infektion schon l\u00e4nger besteht (IgG-\u00adAntik\u00f6rper \u2191).<\/p>\n<p>F\u00fcr die meisten Erreger stehen allerdings nur Tests zur Verf\u00fcgung, die IgG-Antik\u00f6rper nachweisen. Die Untersuchung einer einzelnen Probe f\u00fchrt in manchen F\u00e4llen zu einem wenig \u00adaussagekr\u00e4ftigen Ergebnis. Ein positives Ergebnis kann z. B. auf eine fr\u00fcher stattgefundene Infektion oder Impfung zur\u00fcck\u00adzuf\u00fchren sein. Ein falsch negatives Ergebnis ist bei einer zu fr\u00fchen Probenentnahme m\u00f6glich.<\/p>\n<p>Hingegen kann die Untersuchung eines Serumpaares, welches im Abstand von ca. 2 \u2013 4 Wochen entnommen wurde, bei der Diagnosestellung helfen und die Interpretation der Testergebnisse erleichtern \u2013 wenn auch in einigen F\u00e4llen nur retrospektiv. Ein 4-facher Titeranstieg bzw. ein signifikanter Anstieg des Messwertes weist auf eine vor kurzem stattgefundene Exposition (Impfung oder akute Infektion) hin (Abbildung 2).<\/p>\n<p>In unklaren F\u00e4llen bzw. wenn vorerst nur ein direkter Erregernachweis durchgef\u00fchrt werden soll, kann es hilfreich sein, am Anfang einer Erkrankung Blut zu entnehmen und das Serum bei -20\u00b0C zu asservieren. Diese \u201eAkut-Probe\u201c kann dann zu einem sp\u00e4teren Zeitpunkt gemeinsam mit einer \u201eRekonvaleszenz-Probe\u201c als sog. \u201eSerumpaar\u201c untersucht werden.<\/p>\n<\/div>\n<div>\n<p>Da die Werte verschiedener Labore aufgrund unterschiedlicher Testdurchf\u00fchrung i. d. R. nicht miteinander vergleichbar sind, sollten Serumpaarproben immer mit derselben Methode und im selben Labor untersucht werden.<\/p>\n<p>F\u00fcr den Nachweis von Antik\u00f6rpern im Serum werden v. a. Enzyme Linked Immunosorbent \u00adAssays oder Immunfluoreszenztests verwendet. In der tier\u00e4rztlichen Praxis finden auch Schnelltests \u00adAnwendung, meist in Form von Lateral Flow Tests. F\u00fcr spezielle Fragestellungen steht f\u00fcr einige wenige Erreger ein Western Blot zur Verf\u00fcgung. Er dient in manchen F\u00e4llen auch als Best\u00e4tigungstest. Der \u00adVirusneutralisationstest (VNT) stellt den \u00adspezifischsten serologischen Test dar, kann aber nur f\u00fcr Viren mit zytopathischem Effekt verwendet werden. Dabei werden Antik\u00f6rper nachgewiesen, die tats\u00e4chlich das Virus neutralisieren, also die Infektiosit\u00e4t eines Virus aufheben. Mit diesem Test ist also eine Aussage hinsichtlich der Protektivit\u00e4t m\u00f6glich. Hingegen ist der Nachweis von Anti\u00adk\u00f6rpern z. B. mittels ELISA nicht gleichzusetzen mit einem vorhandenen Immunschutz. Je nach Erreger spielt daf\u00fcr neben der humoralen auch die zellul\u00e4re Immunantwort eine wichtige Rolle.<\/p>\n<p>Als Probenmaterial wird routinem\u00e4\u00dfig Serum oder Plasma verwendet. Dieses sollte idealerweise zeitnah abpipettiert werden, um den St\u00f6rfaktor H\u00e4molyse zu umgehen. Bei speziellen Fragestellungen sind Antik\u00f6rper-Nachweise auch z. B. in Liquor cerebrospinalis oder Kammerwasser m\u00f6glich. Antik\u00f6rper sind relativ stabil, d. h. deren Nachweis ist in der Regel nicht zeitkritisch. Proben k\u00f6nnen \u00fcber einen l\u00e4ngeren Zeitraum gek\u00fchlt oder gefroren aufbewahrt werden.<\/p>\n<p>Das Vorhandensein eines Antik\u00f6rperspiegels gegen einen bestimmten Erreger ist kein Beweis f\u00fcr eine \u00e4tiologische Rolle im Rahmen eines Krankheitsgeschehens. Daf\u00fcr muss der positive Befund im Zusammenhang mit vorhandenen klinischen Symptomen und ggf. epidemiologischen Daten diskutiert werden.<br \/>\nBesonders bei Erregern, die z. B. nur saisonal oder zyklisch im peripheren Blut vorhanden oder aufgrund ihrer Gewebeverteilung schwierig nachweisbar sind, kann die Serologie dem Direktnachweis \u00fcberlegen sein.<\/p>\n<h2>Fazit<\/h2>\n<p>Eine allgemeing\u00fcltige Empfehlung zur Wahl eines diagnostischen Tests kann aufgrund der Vielfalt von Infektionskrankheiten nicht ausgesprochen werden. Erreger- und Antik\u00f6rpernachweis haben nebeneinander Bestand. Je nach Fragestellung kann einer von beiden aussagekr\u00e4ftiger sein oder sie k\u00f6nnen sich erg\u00e4nzen (Tabelle 2). Oftmals ist die Durchf\u00fchrung mehrerer Tests sinnvoll bzw. notwendig.<\/p>\n<p>Im Vorfeld muss durch Erhebung der Anamnese und durch eine klinische Untersuchung eine Verdachtsdiagnose formuliert und das Stadium der Infektion abgesch\u00e4tzt werden. Die Pathogenese der Erkrankung sowie die Verf\u00fcgbarkeit entsprechender Tests entscheiden dann zus\u00e4tzlich \u00fcber das zu \u00adw\u00e4hlende Verfahren.<\/p>\n<div>Um ein aussagekr\u00e4ftiges Ergebnis zu erzielen, sollte ein besonderes Augenmerk auf folgende kritische Punkte gelegt werden:<\/div>\n<ul>\n<li>Zeitpunkt der Probenentnahme<\/li>\n<li>Art, Qualit\u00e4t und Quantit\u00e4t der Probe<\/li>\n<li>ggf. notwendige Stabilisatoren bzw.\u00a0Transportmedien<\/li>\n<li>Transportdauer und -bedingungen<\/li>\n<\/ul>\n<p style=\"text-align: right;\"><em>Dr. Michaela Gentil<\/em><\/p>\n<p>&nbsp;<\/p>\n<\/div>\n<blockquote>\n<p style=\"padding-left: 40px;\">Unser <strong>breites Leistungssprektrum<\/strong> rund um die direkte und indirekte Erregerdiagnostik beim Pferd finden Sie in der Rubrik &#171;Infektionskrankheiten&#187; unter: www.laboklin.com<\/p>\n<\/blockquote>\n<p>&nbsp;<\/p>\n<p><strong>Tab. 2:<\/strong> Kurz und knapp \u2013 einige beispielhafte Infektionserreger und m\u00f6gliche Nachweismethoden (fett gedruckt = Methode der Wahl); <em>Quelle: Laboklin<\/em><\/p>\n<table width=\"661\">\n<tbody valign=\"top\">\n<tr style=\"color: #ffffff;\" bgcolor=\"e51e1e\">\n<td width=\"151\"><strong>Infektionserreger<\/strong><\/td>\n<td width=\"255\"><strong>Erregernachweis<\/strong><\/td>\n<td width=\"255\"><strong>Antik\u00f6rpernachweis<\/strong><\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"151\"><strong>Equines Herpesvirus 1<\/strong><\/td>\n<td width=\"255\"><strong>PCR aus EDTA-Blut (nur in Fieberphase!), tiefem Nasenabstrich, Abortmaterial (v. a. Plazenta) oder Liquor cerebrospinalis, je nach klinischer Symptomatik<\/strong><\/td>\n<td width=\"255\">Erkrankung meist perakut bis akut, au\u00dferdem hohe Seropr\u00e4valenz in der Pferdepopulation aufgrund der weiten Verbreitung des Virus und der Impfung; evtl. retrospektiver Nachweis \u00fcber Serumpaar m\u00f6glich<\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"151\"><strong><em>Borrelia burgdorferi<\/em><\/strong><\/td>\n<td width=\"255\">Direktnachweis ist schwierig, ggf. kann PCR aus Synovia, Haut- oder Gelenkbiopsien versucht werden<\/td>\n<td width=\"255\"><strong>IgM- und IgG-Antik\u00f6rper als Suchtest, Western Blot als Best\u00e4tigungstest und zur Differenzierung Impf-\/ Infektionsantik\u00f6rper<\/strong><\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"151\"><strong>West Nile Virus<\/strong><\/td>\n<td width=\"255\">PCR aus EDTA-Blut i. d. R. nicht zielf\u00fchrend, da Vir\u00e4mie bei Auftreten klinischer Symptome schon abgeklungen ist. Virusnachweis mittels PCR kann aus Liquor cerebrospinalis oder Gewebe (post-mortem) versucht werden.<\/td>\n<td width=\"255\"><strong>Zeitgleicher Nachweis von IgM- und IgG-Antik\u00f6rpern mittels ELISA. Kreuzreaktionen mit anderen Flaviviren (z. B. FSME, Usutu) sind m\u00f6glich! Im positiven Fall erfolgt daher Ausdifferenzierung mittels VNT.<\/strong><\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"151\"><strong><em>Dermatophilus congolensis<\/em><\/strong><\/td>\n<td width=\"255\"><strong>Nachweis in Schuppen- oder Krustenmaterial mittels Zytologie (Sensitivit\u00e4t eingeschr\u00e4nkt) oder PCR<\/strong><\/td>\n<td width=\"255\">Kein Test verf\u00fcgbar<\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"151\"><strong>Equine infekti\u00f6se An\u00e4mie Virus (EIA)<\/strong><\/td>\n<td width=\"255\">Hohe genetische Variabilit\u00e4t des Virus, Virusnachweis ist schwierig<\/td>\n<td width=\"255\"><strong>Einmal infizierte Tiere bleiben lebenslang Virustr\u00e4ger (persistierende Infektion) und seropositiv. Diagnosestellung mittels Coggins-Test oder c-ELISA. Aber: Inkubationszeit bis zu 3 Monate, ggf. nachtesten! CAVE: Fohlen infizierter Stuten k\u00f6nnen bis zu einem Alter von 6 Monaten aufgrund maternaler Antik\u00f6rpern positiv sein.<\/strong><\/td>\n<\/tr>\n<\/tbody>\n<\/table>\n<p>[\/vc_column_text][\/vc_column][\/vc_row][vc_row type=&#187;vc_default&#187; gap=&#187;10&#8243; css=&#187;.vc_custom_1730977374640{margin-top: 30px !important;}&#187;][vc_column width=&#187;1\/2&#8243;][vc_column_text]<\/p>\n<h5><strong>Weiterf\u00fchrende<\/strong> <strong>Literatur:<\/strong><\/h5>\n<ul>\n<li>\n<h6><span style=\"color: #808080;\"><strong>Lunn DP, Davis-Poynter N, Flaminio MJ, Horohov DW, Osterrieder K, Pusterla N, Townsend HG. Equine herpesvirus-1 consensus statement. J Vet Intern Med. 2009 May-Jun;23(3):450-61. doi: 10.1111\/j.1939-1676.2009.0304.x.<\/strong><\/span><\/h6>\n<\/li>\n<li>\n<h6><span style=\"color: #808080;\"><strong>Probst C, K\u00f6nig P, Gethmann J, H\u00f6reth-B\u00f6ntgen D, Staubach C, Conraths FJ, Kramer M. Ansteckende Blutarmut der Einhufer \u2013 der Status quo. Deutsches Tier\u00e4rzteblatt. 2010. 10:1598-1605.<\/strong><\/span><\/h6>\n<\/li>\n<li>\n<h6><span style=\"color: #808080;\"><strong>Quinn PJ, Markey BK, Leonard FC, Hartigan P, Fanning S, Fitzpatrick ES. Veterinary Microbiology and Microbial Disease. 2nd Edition: Wiley-Blackwell; 2011.<\/strong><\/span><\/h6>\n<\/li>\n<\/ul>\n<p>[\/vc_column_text][\/vc_column][vc_column width=&#187;1\/2&#8243;][vc_row_inner equal_height=&#187;yes&#187; content_placement=&#187;middle&#187; gap=&#187;10&#8243;][vc_column_inner width=&#187;1\/4&#8243; css=&#187;.vc_custom_1730977399709{background-color: #e7e7e7 !important;}&#187;][vc_icon icon_fontawesome=&#187;fas fa-file-pdf&#187; color=&#187;custom&#187; size=&#187;xl&#187; align=&#187;center&#187; css=&#187;.vc_custom_1730977421194{margin-top: 10px !important;margin-bottom: 10px !important;padding-top: 20px !important;padding-bottom: 20px !important;}&#187; custom_color=&#187;#e51e1e&#187; link=&#187;url:https%3A%2F%2Flaboklin.de%2Fwp-content%2Fuploads%2F2023%2F11%2FLA_Pferd_November_2023_DE_FINAL.pdf|target:_blank&#187;][\/vc_column_inner][vc_column_inner width=&#187;3\/4&#8243; css=&#187;.vc_custom_1730977429790{background-color: #e7e7e7 !important;}&#187;][vc_column_text css=&#187;.vc_custom_1730977439007{margin-top: 10px !important;margin-bottom: 10px !important;padding-top: 20px !important;padding-bottom: 20px !important;}&#187;]<a href=\"https:\/\/laboklin.de\/wp-content\/uploads\/2023\/11\/LA_Pferd_November_2023_DE_FINAL.pdf\" target=\"_blank\" rel=\"noopener\"><strong>Die Qual der Wahl: Erreger- oder Antik\u00f6rpernachweis zur Diagnostik von Infektionserkrankungen?<\/strong><\/a>[\/vc_column_text][\/vc_column_inner][\/vc_row_inner][\/vc_column][\/vc_row]<\/p>\n<\/div>","protected":false},"excerpt":{"rendered":"<p>F\u00fcr den Nachweis von Infektionserkrankungen steht der Tier\u00e4rztin und dem Tierarzt ein breites \u00adSpektrum an Labortests zur Verf\u00fcgung. <\/p>\n","protected":false},"author":1,"featured_media":1454430,"comment_status":"closed","ping_status":"closed","sticky":false,"template":"","format":"standard","meta":{"_seopress_robots_primary_cat":"none","_seopress_titles_title":"%%post_title%%","_seopress_titles_desc":"%%post_excerpt%%","_seopress_robots_index":"","footnotes":""},"categories":[501],"tags":[],"class_list":["post-1454497","post","type-post","status-publish","format-standard","has-post-thumbnail","hentry","category-laboklin-aktuell-pferd-2023-de-ch","category-501","description-off"],"_links":{"self":[{"href":"https:\/\/laboklin.de\/de-ch\/wp-json\/wp\/v2\/posts\/1454497","targetHints":{"allow":["GET"]}}],"collection":[{"href":"https:\/\/laboklin.de\/de-ch\/wp-json\/wp\/v2\/posts"}],"about":[{"href":"https:\/\/laboklin.de\/de-ch\/wp-json\/wp\/v2\/types\/post"}],"author":[{"embeddable":true,"href":"https:\/\/laboklin.de\/de-ch\/wp-json\/wp\/v2\/users\/1"}],"replies":[{"embeddable":true,"href":"https:\/\/laboklin.de\/de-ch\/wp-json\/wp\/v2\/comments?post=1454497"}],"version-history":[{"count":7,"href":"https:\/\/laboklin.de\/de-ch\/wp-json\/wp\/v2\/posts\/1454497\/revisions"}],"predecessor-version":[{"id":1493597,"href":"https:\/\/laboklin.de\/de-ch\/wp-json\/wp\/v2\/posts\/1454497\/revisions\/1493597"}],"wp:featuredmedia":[{"embeddable":true,"href":"https:\/\/laboklin.de\/de-ch\/wp-json\/wp\/v2\/media\/1454430"}],"wp:attachment":[{"href":"https:\/\/laboklin.de\/de-ch\/wp-json\/wp\/v2\/media?parent=1454497"}],"wp:term":[{"taxonomy":"category","embeddable":true,"href":"https:\/\/laboklin.de\/de-ch\/wp-json\/wp\/v2\/categories?post=1454497"},{"taxonomy":"post_tag","embeddable":true,"href":"https:\/\/laboklin.de\/de-ch\/wp-json\/wp\/v2\/tags?post=1454497"}],"curies":[{"name":"wp","href":"https:\/\/api.w.org\/{rel}","templated":true}]}}