{"id":1337333,"date":"2016-02-15T14:43:56","date_gmt":"2016-02-15T13:43:56","guid":{"rendered":"https:\/\/laboklin.de\/einsatz-der-zytologie-bei-hautveraenderungen-von-reptilien\/"},"modified":"2025-02-24T11:30:38","modified_gmt":"2025-02-24T10:30:38","slug":"einsatz-der-zytologie-bei-hautveraenderungen-von-reptilien","status":"publish","type":"post","link":"https:\/\/laboklin.de\/de-ch\/einsatz-der-zytologie-bei-hautveraenderungen-von-reptilien\/","title":{"rendered":"Einsatz der Zytologie bei Hautver\u00e4nderungen von Reptilien"},"content":{"rendered":"

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In der Kleintiermedizin hat sich die Zytologie seit vielen Jahren als Standardtechnik etabliert. Bislang kommt diese Untersuchungstechnik in der Reptilienmedizin deutlich seltener zum Einsatz. In der Reptilienpraxis werden viele dermatologische Patienten vorgestellt, bei denen die Liste der Differenzialdiagnosen mit Hilfe der Zytologie stark eingeschr\u00e4nkt werden kann oder so eine unmittelbare Therapie nach Diagnosestellung erm\u00f6glicht. Dies ist von gro\u00dfem Vorteil, da viele Patienten mit fortgeschrittenen Krankheitserscheinungen vorgestellt werden, die ein schnelles und konsequentes Eingreifen n\u00f6tig machen.<\/p>\n

Die Zytologie ist eine typische \u201eSoforttechnik\u201c, d.h. man kann unmittelbar nach der Entnahme zu einem Ergebnis kommen. Auch bei Einsendung in ein Labor liegt das Ergebnis einen Tag eher als die Histologie vor, da keine Einbettung erforderlich ist. Der technische Aufwand ist gering, F\u00e4rbel\u00f6sungen k\u00f6nnen leicht und kosteng\u00fcnstig vorr\u00e4tig gehalten werden.<\/p>\n

Die Zytologie besch\u00e4ftigt sich mit der Zelldiagnostik an gef\u00e4rbten Ausstrichen. Ihr Ziel ist es, schnell und ohne gro\u00dfe technische Ma\u00dfnahmen, sowie ohne Narkose mit minimalinvasiven Verfahren eine Steigerung der klinischen Diagnostik zu erzielen. Wichtig f\u00fcr die Beurteilung der Pr\u00e4parate und die Interpretation der Ergebnisse ist ein aussagekr\u00e4ftiger Vorbericht. Zytologisch untersucht werden alle Materialien, bei denen es technisch m\u00f6glich ist, auswertbare Ausstriche herzustellen. Dies k\u00f6nnen beispielsweise Pr\u00e4parate von Haut, Panzer, Umfangsvermehrungen, Sekreten, Exkreten oder Exsudaten sein. Die Methode der Probenentnahme richtet sich nach den jeweiligen Bedingungen wie Lokalisation, zu erwartender Ausbeute\/Materialmenge und Konsistenz.<\/p>\n

Im Folgenden werden die verschiedenen Techniken und ihre Einsatzm\u00f6glichkeiten aufgef\u00fchrt. Das Ziel bei der Anfertigung der zytologischen Pr\u00e4parate ist es, eine Probendicke von einer Zellschicht zu erreichen (monolayer). Hierzu wird entweder die Technik zur Erstellung eines Blutausstriches (mit einem Deckgl\u00e4schen im 45\u00b0 Winkel) angewandt oder die Ausziehtechnik. Dazu legt man ein Deckglas auf das aspirierte Material und wartet bis sich das aspirierte Material zwischen den Objekttr\u00e4gern verteilt. Dann werden die Objekttr\u00e4ger ohne Druck in L\u00e4ngsrichtung auseinandergezogen. Die Pr\u00e4parate werden luftgetrocknet und vor dem F\u00e4rben nicht weiter behandelt.<\/p>\n

Materialentnahme und Herstellung von Pr\u00e4paraten<\/h2>\n

1. Feinnadelaspiration<\/b><\/p>\n

Diese Technik geh\u00f6rt zu den am h\u00e4ufigsten angewendeten Verfahren. In erster Linie werden Umfangsvermehrungen und Hautl\u00e4sionen untersucht. Da mit dieser Technik oft recht viel Zellmaterial gewonnen werden kann, ist diese Technik sowohl zur Differenzierung von Entz\u00fcndungen (vor allem den beim Reptil vorherrschenden Granulomen und Abszessen) (Abb. 1) und von Neoplasien (Abb. 2) geeignet. Es kommen 20 G bis 25 G Kan\u00fclen und 2\u00ad5 ml Spritzen zum Einsatz. Dabei gilt der Grundsatz: je weicher das zu aspirierende Gewebe, desto feiner die Kan\u00fcle. Es wird in das zu untersuchende Gewebe eingestochen und Material entweder mit oder ohne Aspiration gewonnen. Bei der Feinnadelaspiration wird die Kan\u00fcle in mehrere Richtungen vorgeschoben und Material durch \u201eSchneiden\u201c gegen den Gewebewiderstand gewonnen. Der Kan\u00fcleninhalt wird vorsichtig auf die Mitte eines oder mehrerer Objekttr\u00e4ger ausgepresst. Der Ausstrich sollte direkt nach der Entnahme erfolgen. So kann Autolyse oder Koagulation der Probe in der Nadel vermieden werden.<\/p>\n

2. Aspiration von Fl\u00fcssigkeiten<\/strong><\/p>\n

F\u00fcr die Punktion von dermalen Fl\u00fcssigkeitsansammlungen wie sie bei der Blister Disease (Vesikelbildung in der Haut) von Schlangen (Technopathie durch zu feuchte Haltung), Unterhaut\u00f6demen bei Kreislaufinsuffizienzen oder bei artikul\u00e4ren Schwellungen im Rahmen einer Gelenkgicht (Abb. 3) zu beobachtet sind, werden in der Regel 18 G Kan\u00fclen und 2\u00ad5 ml Spritzen verwendet. Ist die aspirierte Fl\u00fcssigkeit getr\u00fcbt, kann die normale Blutausstrichtechnik verwendet werden. Die Anfertigung von Ausstrichen aus den Punktaten sollte auf jeden Fall bereits in der Praxis erfolgen. Die Zellerhaltung l\u00e4sst w\u00e4hrend des Versandes durch Autolyse und mikrobielle Besiedlung sehr schnell nach. Ist die Fl\u00fcssigkeit klar, sollte diese zentrifugiert (5 min bei 1500 \u2013 3000 U\/min) und Sedimentausstriche angefertigt werden. F\u00fcr den Versand sollte die Fl\u00fcssigkeit f\u00fcr die zytologische und klinisch\u00adchemische Untersuchung in ein EDTA\u00ad oder Lithium\u00ad-Heparin-\u00adR\u00f6hrchen \u00fcberf\u00fchrt werden. Als Mindestmenge f\u00fcr Punktate zur Einsendung ins Labor gilt 1 ml. Ab dieser Menge k\u00f6nnen alle relevanten Untersuchungen durchgef\u00fchrt werden.<\/p>\n

3. Abklatsch-Pr\u00e4parate<\/strong><\/p>\n

Abklatsch\u00ad-Pr\u00e4parate werden vor allem von Hautl\u00e4sionen angefertigt. Bei trockenen Haut\u00ad oder Panzerver\u00e4nderungen gestaltet sich dies oftmals schwierig, da kaum relevantes Material mit dieser Technik zu gewinnen ist. Generell wird der Objekttr\u00e4ger bei der Beprobung hierzu leicht \u00fcber die zu untersuchende Gewebsfl\u00e4che abgerollt. Geht es um den Nachweis oberfl\u00e4chlicher\u00a0 Infektionserreger, darf keine Reinigung der Lokalisation erfolgen. F\u00fcr den Nachweis von Erregern in der Tiefe kann eine K\u00fcrettage sinnvoll sein. Nur so besteht eine Aussicht darauf Keime wie Mykobakterien oder Pilze aus den L\u00e4sionen zu gewinnen. Bei einer Tumorfragestellung in ulzerierten Lokalisationen muss zun\u00e4chst mit Ringer\u00ad oder Kochsalzl\u00f6sung eine Reinigung zur Freilegung der Zellen erfolgen. Sehr feuchte\/blutende Lokalisationen sollten vorsichtig trocken getupft werden, um Aussicht auf relevante Zellen zu haben. Abklatsch\u00ad-Pr\u00e4parate k\u00f6nnen auch von exzidierten Gewebeproben angefertigt werden. Dazu wird eine frische Schnittfl\u00e4che geschaffen und die Fl\u00fcssigkeit an der Schnittfl\u00e4che mittels Flie\u00dfpapier ab getupft. Die Kantenl\u00e4nge der Gewebest\u00fccke sollte nicht mehr als 0,5 cm betragen. Das Gewebe wird mit der Schnittfl\u00e4che vorsichtig am besten mehrmals auf einen Objekttr\u00e4ger getupft, um verschieden dicke Pr\u00e4parate zu erhalten. Die Technik bietet dabei die M\u00f6glichkeit zwischen Entz\u00fcndung und Tumor zu differenzieren, was oftmals allein auf makroskopischer Basis aufgrund des \u00e4hnlichen Erscheinungsbildes nicht m\u00f6glich ist. Dies gilt vor allem f\u00fcr konfluierende Granulome.<\/p>\n

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