{"id":1633434,"date":"2026-09-01T18:22:01","date_gmt":"2026-09-01T16:22:01","guid":{"rendered":"https:\/\/laboklin.de\/abortdiagnostik-bei-wiederkaeuern-und-neuweltkamelen\/"},"modified":"2026-09-02T20:41:24","modified_gmt":"2026-09-02T18:41:24","slug":"abortdiagnostik-bei-wiederkaeuern-und-neuweltkamelen","status":"publish","type":"post","link":"https:\/\/laboklin.de\/de-at\/abortdiagnostik-bei-wiederkaeuern-und-neuweltkamelen\/","title":{"rendered":"Abortdiagnostik bei Wiederk\u00e4uern und Neuweltkamelen"},"content":{"rendered":"<div class=\"wpb-content-wrapper\" id=\"wpb-content-root\"><p>[vc_row][vc_column width=&#8220;2\/3&#8243;][vc_column_text]Bei Rindern und kleinen Wiederk\u00e4uern kommen Aborte bei 5\u201312 % der Tr\u00e4chtigkeiten vor. Aus labordiagnostischer Sicht sind die infekti\u00f6sen Ursachen von besonderem Interesse, k\u00f6nnen aber h\u00e4ufig nicht sicher diagnostiziert werden. Die folgende Zusammenstellung beschreibt die Erreger und die makroskopischen und histologischen Befunde und gibt Hinweise zum richtigen Probenmaterial.<\/p>\n<h2>Aborterreger bei Rindern und kleinen Wiederk\u00e4uern<\/h2>\n<h3><strong>Viren<\/strong><\/h3>\n<ul>\n<li>\n<h4>Bovines Virusdiarrhoe-Virus (BVDV):<strong><br \/>\n<\/strong><\/h4>\n<p>Aufgrund von nationalen Bek\u00e4mpfungsma\u00dfnahmen treten BVDV-assoziierte Tr\u00e4chtigkeitsveruste in mittel- und nordeurop\u00e4ischen L\u00e4ndern inzwischen selten auf. Das Pestivirus wird transplazentar \u00fcbertragen und f\u00fchrt in der fr\u00fchen Tr\u00e4chtigkeit zu Resorption, Mumifizierung oder Fr\u00fchabort, sp\u00e4ter zu persistent infizierten K\u00e4lbern (PI-Tiere) und in der Sp\u00e4ttr\u00e4chtigkeit zu zerebralen Fehlbildungen (okulozerebell\u00e4res Syndrom, Porenzephalie bis Hydranenzephalie, Kleinhirnhypoplasie). Histologisch finden sich bei betroffenen Feten z. T. Lymphozytenanreicherungen oder Myelinmangel im ZNS.<br \/>\n<strong>Diagnostik: <\/strong>Virusnachweis mittels PCR aus fetalem Gewebe (Milz, Thymus, Leber, Gehirn); Antik\u00f6rpernachweis aus Serum des Muttertiers; PI-Tiere: PCR aus EDTA-Blut oder Gewebe<\/li>\n<\/ul>\n<ul>\n<li>\n<h4>Border Disease Virus (BDV):<\/h4>\n<p>Das BDV ist eng mit dem BVDV verwandt und betrifft besonders Schafe. Die Auspr\u00e4gungen des klinischen Geschehens sind ebenfalls abh\u00e4ngig vom Tr\u00e4chtigkeitsstadium und vom Zeitpunkt der Infektion und weitestgehend analog zum BVDV. Auffallend sind schw\u00e4chliche, unterentwickelte, teils fehlgebildete L\u00e4mmer, die ein haariges Vlies und ein zentralnerv\u00f6s bedingtes Zittern aufweisen, sog. \u201eHairy Shaker\u201c. Histologisch zeigt sich auch hier ein Myelinmangel im ZNS.<br \/>\n<strong>Diagnostik: <\/strong>Virusnachweis mittels PCR aus fetalem Gewebe (Milz, Leber, Gehirn); Antik\u00f6rpernachweis aus Serum des Muttertiers; PI-Tiere: PCR aus EDTA-Blut oder Gewebe<\/li>\n<\/ul>\n<p>[\/vc_column_text][\/vc_column][vc_column width=&#8220;1\/3&#8243;][vc_column_text]<\/p>\n\n\t\t\t<style type='text\/css'>\n\t\t\t\t#gallery-1 {\n\t\t\t\t\tmargin: auto;\n\t\t\t\t}\n\t\t\t\t#gallery-1 .gallery-item {\n\t\t\t\t\tfloat: left;\n\t\t\t\t\tmargin-top: 10px;\n\t\t\t\t\ttext-align: center;\n\t\t\t\t\twidth: 100%;\n\t\t\t\t}\n\t\t\t\t#gallery-1 img {\n\t\t\t\t\tborder: 2px solid #cfcfcf;\n\t\t\t\t}\n\t\t\t\t#gallery-1 .gallery-caption {\n\t\t\t\t\tmargin-left: 0;\n\t\t\t\t}\n\t\t\t\t\/* see gallery_shortcode() in wp-includes\/media.php *\/\n\t\t\t<\/style>\n\t\t<div id='gallery-1' class='dt-gallery-container gallery galleryid-1633434 gallery-columns-1 gallery-size-full'><dl class='gallery-item'>\n\t\t\t\t<dt class='gallery-icon portrait'>\n\t\t\t\t\t<a class=\"rollover rollover-zoom dt-pswp-item\" title=\"\" data-dt-img-description=\"LABOklin aktuell Nutztiere | &lt;b&gt;Abb. 1:&lt;\/b&gt; Postmortal entnommene Karunkel eines Rindes, \n welches nach einer Sectio caesarea verstorben war. In  Formalin fixiert wurden Gewebeteile davon zur pathohistologischen Untersuchung eingeschickt. &lt;br&gt;&lt;i&gt;Bildquelle: Asle Bj\u00f8rgaas&lt;\/i&gt;\" data-large_image_width=\"844\" data-large_image_height=\"950\"href='https:\/\/laboklin.de\/wp-content\/uploads\/2026\/09\/la_09.26_postmortal-entnommene-karunkel-eines-rindes.jpg'><img loading=\"lazy\" decoding=\"async\" width=\"844\" height=\"950\" src=\"https:\/\/laboklin.de\/wp-content\/uploads\/2026\/09\/la_09.26_postmortal-entnommene-karunkel-eines-rindes.jpg\" class=\"attachment-full size-full\" alt=\"Polydipsie Kleins\u00e4uger,Polyurie Kleins\u00e4uger,Harnuntersuchung,Harngewinnung,Harnstatus,Niereninsuffizienz,osmotische Diurese\" aria-describedby=\"gallery-1-1633401\" srcset=\"https:\/\/laboklin.de\/wp-content\/uploads\/2026\/09\/la_09.26_postmortal-entnommene-karunkel-eines-rindes.jpg 844w, https:\/\/laboklin.de\/wp-content\/uploads\/2026\/09\/la_09.26_postmortal-entnommene-karunkel-eines-rindes-267x300.jpg 267w, https:\/\/laboklin.de\/wp-content\/uploads\/2026\/09\/la_09.26_postmortal-entnommene-karunkel-eines-rindes-768x864.jpg 768w\" sizes=\"auto, (max-width: 844px) 100vw, 844px\" \/><\/a>\n\t\t\t\t<\/dt>\n\t\t\t\t\t<dd class='wp-caption-text gallery-caption' id='gallery-1-1633401'>\n\t\t\t\t\t<b>Abb. 1:<\/b> Postmortal entnommene Karunkel eines Rindes, \n welches nach einer Sectio caesarea verstorben war. In  Formalin fixiert wurden Gewebeteile davon zur pathohistologischen Untersuchung eingeschickt. <br><i>Bildquelle: Asle Bj\u00f8rgaas<\/i>\n\t\t\t\t\t<\/dd><\/dl><br style=\"clear: both\" \/><dl class='gallery-item'>\n\t\t\t\t<dt class='gallery-icon landscape'>\n\t\t\t\t\t<a class=\"rollover rollover-zoom dt-pswp-item\" title=\"\" data-dt-img-description=\"LABOklin aktuell Nutztiere | &lt;b&gt;Abb. 2:&lt;\/b&gt; Detailaufnahme (23-fache Vergr\u00f6\u00dferung, HE-F\u00e4rbung) einer hochgradigen multifokalen bis koaleszierenden akuten nekrotisierenden und fibrinosupputativen Plazentitis mit zahlreichen intral\u00e4sionalen kokkoiden bis kokkobazill\u00e4ren Bakterien. Verdacht einer Septik\u00e4mie durch opportunistische Erreger.&lt;br&gt;&lt;i&gt;\nBildquelle: Laboklin&lt;\/i&gt;\n\" data-large_image_width=\"1200\" data-large_image_height=\"708\"href='https:\/\/laboklin.de\/wp-content\/uploads\/2026\/09\/la_09.26_-detailaufnahme-einer-hochgradigen-multifokalen-plazentitis-.jpg'><img loading=\"lazy\" decoding=\"async\" width=\"1200\" height=\"708\" src=\"https:\/\/laboklin.de\/wp-content\/uploads\/2026\/09\/la_09.26_-detailaufnahme-einer-hochgradigen-multifokalen-plazentitis-.jpg\" class=\"attachment-full size-full\" alt=\"Polydipsie Kleins\u00e4uger,Polyurie Kleins\u00e4uger,Harnuntersuchung,Harngewinnung,Harnstatus,Niereninsuffizienz,osmotische Diurese\" aria-describedby=\"gallery-1-1633418\" srcset=\"https:\/\/laboklin.de\/wp-content\/uploads\/2026\/09\/la_09.26_-detailaufnahme-einer-hochgradigen-multifokalen-plazentitis-.jpg 1200w, https:\/\/laboklin.de\/wp-content\/uploads\/2026\/09\/la_09.26_-detailaufnahme-einer-hochgradigen-multifokalen-plazentitis--300x177.jpg 300w, https:\/\/laboklin.de\/wp-content\/uploads\/2026\/09\/la_09.26_-detailaufnahme-einer-hochgradigen-multifokalen-plazentitis--1024x604.jpg 1024w, https:\/\/laboklin.de\/wp-content\/uploads\/2026\/09\/la_09.26_-detailaufnahme-einer-hochgradigen-multifokalen-plazentitis--768x453.jpg 768w\" sizes=\"auto, (max-width: 1200px) 100vw, 1200px\" \/><\/a>\n\t\t\t\t<\/dt>\n\t\t\t\t\t<dd class='wp-caption-text gallery-caption' id='gallery-1-1633418'>\n\t\t\t\t\t<b>Abb. 2:<\/b> Detailaufnahme (23-fache Vergr\u00f6\u00dferung, HE-F\u00e4rbung) einer hochgradigen multifokalen bis koaleszierenden akuten nekrotisierenden und fibrinosupputativen Plazentitis mit zahlreichen intral\u00e4sionalen kokkoiden bis kokkobazill\u00e4ren Bakterien. Verdacht einer Septik\u00e4mie durch opportunistische Erreger.<br><i>\nBildquelle: Laboklin<\/i>\n\n\t\t\t\t\t<\/dd><\/dl><br style=\"clear: both\" \/>\n\t\t\t<\/div>\n\n<p>[\/vc_column_text][\/vc_column][\/vc_row][vc_row][vc_column css_animation=&#8220;none&#8220; css=&#8220;.vc_custom_1788279555493{margin-top: 10px !important;margin-bottom: 20px !important;}&#8220; offset=&#8220;vc_col-xl-inherit vc_col-lg-inherit vc_col-md-12 vc_col-sm-inherit&#8220;][vc_column_text css_animation=&#8220;none&#8220; css=&#8220;.vc_custom_1788374479694{padding-right: 5% !important;}&#8220;]<\/p>\n<ul>\n<li>\n<h4>Blauzungenvirus (BTV):<\/h4>\n<p>BTV verursacht Fehlgeburten, Totgeburten und fetale Missbildungen wie Porenzephalie bis Hydranenzephalie, Brachyzephalie mit Brachygnathie und Kleinhirnaplasie.<br \/>\n<strong>Diagnostik: <\/strong>Virusnachweis mittels PCR aus fetalem Gewebe (Milz, Gehirn) oder aus EDTA-Blut des Muttertiers<\/li>\n<\/ul>\n<ul>\n<li>\n<h4>Schmallenberg-Virus (SBV):<\/h4>\n<p>Durch SBV abortierte Feten zeigen h\u00e4ufig zerebrale Fehlbildungen wie bei BTV oder BVDV wenn die Infektion im ersten Tr\u00e4chtigkeitsdrittel stattfindet. Bei einer Infektion im zweiten Tr\u00e4chtigkeits-drittel kommt es eher zu skeletalen Missbildungen wie Torticollis, Kyphose, Skoliose, Arthrogrypose und Wirbelmissbildungen mit spinaler Muskelatrophie. Histologisch sind lymphohistiozyt\u00e4re Meningoenzephalomyelitiden mit Gliazellkn\u00f6tchen im Mittelhirn und Hippocampus bei L\u00e4mmern und Ziegen sowie neuronale Nekrosen im Hirnstamm von K\u00e4lbern und bei L\u00e4mmern und K\u00e4lbern eine myofibrill\u00e4re Hypoplasie beschrieben.<br \/>\n<strong>Diagnostik: <\/strong>Virusnachweis mittels PCR aus fetalem Gewebe (Gro\u00dfhirn, Hirnstamm), Fruchtwasser und\/oder Mekonium; w\u00e4hrend der Vir\u00e4miephase bei akut erkrankten Tieren ist auch der PCR-Nachweis aus maternalem EDTA-Blut m\u00f6glich.<\/li>\n<\/ul>\n<h3><strong>Bakterien<\/strong><\/h3>\n<ul>\n<li>\n<h4><em>Campylobacter<\/em> <em>fetus<\/em> <em>fetus<\/em><\/h4>\n<p>f\u00fchrt bei Rindern eher sporadisch zu Tr\u00e4chtigkeitsverlusten, bei Schafen u. U. zu epidemischen Aborten im letzten Tr\u00e4chtigkeitsdrittel. Makroskopisch zeigen sich fibrin\u00f6se Peritonitis und\/oder Pleuritis und\/oder Perikarditis sowie gro\u00dfe, abgegrenzte Lebernekrosen. In der Histologie: eitrig-nekrotisierende Plazentitis mit Vaskulitis, Trophoblasten und zahlreiche kleine gramnegative Bakterien.<br \/>\n<strong>Diagnostik: <\/strong>Kultur aus Vaginalabstrich, Plazenta, fetalem Mageninhalt oder fetalen Organen (Leber), Spezialn\u00e4hrb\u00f6den erforderlich.<\/li>\n<li>\n<h4><em>Chlamydia abortus<\/em><strong><em><br \/>\n<\/em><\/strong><\/h4>\n<p>ist f\u00fcr Rinder ein relevanter Aborterreger und bei kleinen Wiederk\u00e4uern die h\u00e4ufigste infekti\u00f6se Abortursache. Bei Eintrag des Erregers in eine naive Herde kommt es geh\u00e4uft zu Verlammungen in der Sp\u00e4ttr\u00e4chtigkeit, wobei die Muttertiere nur selten klinische Krankheitsanzeichen aufweisen. Urs\u00e4chlich ist eine Plazentitis, die Membranen der Plazenta sind lederartig verdickt, \u00f6demat\u00f6s, entz\u00fcndlich bis nekrotisch, teils mit eitrigem Exudat. Histologisch ist zus\u00e4tzlich eine Vaskulitis erkennbar. Bei Infektion des Fetus sind entz\u00fcndliche bis nekrotische L\u00e4sionen in Leber und Lunge nachweisbar.<br \/>\n<strong>Diagnostik: <\/strong>Erregernachweis mittels PCR aus Plazentamembran, unter Umst\u00e4nden auch aus Kotyledonen und fetalem Gewebe (Lunge, Leber); Antik\u00f6rpernachweis aus Serum des Muttertiers Achtung: hohes zoonotisches Potential!<\/li>\n<\/ul>\n<ul>\n<li>\n<h4><em>Coxiella burnetii <\/em>(Q-Fieber)<strong><br \/>\n<\/strong><\/h4>\n<p>kann in der sp\u00e4ten Tr\u00e4chtigkeit zu Fehlgeburten, Totgeburten oder zur Geburt lebensschwacher Neonaten f\u00fchren. Es sind Ver\u00e4nderungen an der Plazenta erkennbar, vor allem die Kotyledonen zeigen Nekrosen. Histologisch sind Vaskulitiden selten, in den Chorionepithelzellen bilden sich zytoplasmatische Vakuolen mit hoher Erregerkonzentration.<br \/>\n<strong>Diagnostik: <\/strong>Erregernachweis mittels PCR aus Plazenta (Kotyledonen), Fruchtwasser, Vaginalabstrich, Milch; Antik\u00f6rpernachweis aus Serum oder Milch des Muttertiers.<br \/>\nAchtung: hohes zoonotisches Potential!<\/li>\n<\/ul>\n<ul>\n<li>\n<h4><em>Leptospira<\/em><strong><em><br \/>\n<\/em><\/strong><\/h4>\n<p>k\u00f6nnen bei Rindern sporadische Aborte, meist in der zweiten Tr\u00e4chtigkeitsh\u00e4lfte, ausl\u00f6sen. Der Fetus ist h\u00e4ufig autolytisch und kann ikterisch verf\u00e4rbt sein. Histologisch k\u00f6nnen in den fetalen Geweben evtl. Nephritis, Tubulusnekrosen, nicht-eitrige Meningitis und Gallenstauung in der Leber diagnostiziert werden.<br \/>\n<strong>Diagnostik: <\/strong>Erregernachweis mittels PCR aus fetalem Gewebe (Niere); Antik\u00f6rpernachweis aus Serum des Muttertiers.<br \/>\nAchtung: zoonotisches Potential!<\/li>\n<\/ul>\n<ul>\n<li>\n<h4><em>Listeria monocytogenes<\/em><strong><em><br \/>\n<\/em><\/strong><\/h4>\n<p>verursacht als Umwelterreger, der mit schlecht siliertem Futter assoziiert ist, sporadische Aborte vor allem bei Schafen und Rindern, die w\u00e4hrend der gesamten Tr\u00e4chtigkeit auftreten k\u00f6nnen. Typisch ist Nachgeburtsverhalten, der Fetus ist generalisiert infiziert und nach dem Abort h\u00e4ufig autolytisch. Histologisch sind pyogranulomat\u00f6se L\u00e4sionen in Plazenta und Leber zu finden.<br \/>\n<strong>Diagnostik: <\/strong>Erregernachweis mittels PCR oder Kultur aus fetalem Labmageninhalt und Plazenta; Antik\u00f6rpernachweis aus Serum des Muttertiers.<\/li>\n<\/ul>\n<ul>\n<li>\n<h4>Salmonella Abortusovis<\/h4>\n<p>(<em>Salmonella enterica <\/em>subsp. <em>enterica <\/em>Serovar Abortusovis) f\u00fchrt bei Schafen in endemischen Gebieten zu sporadischen Aborten, in naiven Herden kann der Erreger Abortepidemien ausl\u00f6sen. Die Feten sind h\u00e4ufig autolytisch und die Ver\u00e4nderungen an der Plazenta wenig charakteristisch.<br \/>\n<strong>Diagnostik: <\/strong>Kultur aus fetalem Labmageninhalt (anspruchsvoll, da langsame Kolonienbildung und Inhibition durch Wachstum von E. coli z. B. bei Kontamination m\u00f6glich); Antik\u00f6rpernachweis aus Serum des Muttertiers.<\/li>\n<\/ul>\n<ul>\n<li>\n<h4><em>Trueperella pyogenes<\/em><strong><em><br \/>\n<\/em><\/strong><\/h4>\n<p>kann Fehlgeburten verursachen, die meist als Folge einer Bakteri\u00e4mie und daher meist sporadisch, aber recht h\u00e4ufig auftreten. Die Plazenta weist makroskopisch suppurative L\u00e4sionen auf, ebenso die Organe des Fetus, z. als eitrige Bronchopneumonie, die sich histologisch best\u00e4tigen.<br \/>\n<strong>Diagnostik: <\/strong>Kultur aus Plazenta und fetalem Labmageninhalt und Gewebe (Lunge).<\/li>\n<\/ul>\n<h3><strong>Pilze<\/strong><\/h3>\n<p>Es wird gesch\u00e4tzt, dass bei bis zu 8 % der Fehlgeburten Pilze eine Rolle spielen. Urs\u00e4chlich ist meist eine Infektion mit Sporen aus verschimmeltem Futter. Plazenta und Fetus werden h\u00e4matogen infiziert, es entwickelt sich eine Plazentitis, wodurch es zum Abort kommt. Diese treten sporadisch und meist im dritten Tr\u00e4chtigkeitsdrittel auf. Die Muttertiere zeigen h\u00e4ufig Nachgeburtsverhalten und keine weiteren klinischen Symptome.<\/p>\n<ul>\n<li>\n<h4><em>Aspergillus<\/em> <em>fumigatus<\/em><\/h4>\n<p>ist der am h\u00e4ufigsten nachgewiesene mykotische Erreger im Zusammenhang mit Aborten. Seltener kommen Muco-rales (<em>Mucor, Rhizopus, Absidia<\/em>) oder <em>Candida <\/em> vor. Eine mykotische Plazentitis ist gekennzeichnet durch eine ledrige, diffus verdickte, grau-wei\u00df bis br\u00e4unliche Plazenta, die Kotyledonen sind evtl. mit Fibrinexsudat \u00fcberzogen und weisen Nekrosen auf. Der Fetus ist meist frisch oder nur gering autolysiert, es kann zu mykotischer Besiedlung von Atmungs- und Verdauungstrakt kommen. M\u00f6gliche runde Hautl\u00e4sionen k\u00f6nnen hinweisend auf Pilzinfektionen sein.<br \/>\nHistologisch zeigt sich eine akute fibrin\u00f6se bis eitrige Plazentitis mit Vaskulitis, meist mit Pilzf\u00e4den in den Gewebel\u00e4sionen.<br \/>\n<strong>Diagnostik: <\/strong>Kultur aus fetalem Labmageninhalt und Gewebe (Lunge, Darm). Bei kultureller Untersuchung der Plazenta besteht aufgrund von Kontamination aus der Umwelt das Risiko der Fehldiagnose.<\/li>\n<\/ul>\n<h3><strong>Parasiten (Protozoen)<\/strong><\/h3>\n<ul>\n<li>\n<h4><em>Neospora caninum<\/em><strong><em><br \/>\n<\/em><\/strong><\/h4>\n<p>ist mit einem Anteil von 20 bis zu 40 % die h\u00e4ufigste infekti\u00f6se Abortursache beim Rind. Die Infektion erfolgt oral \u00fcber die Aufnahme von Oozysten mit Futter, welches durch Kot von Hunden oder W\u00f6lfen kontaminiert wurde. Bei einem solchen Eintrag von <em>Neospora caninum <\/em>in die Herde k\u00f6nnen Abortst\u00fcrme ausgel\u00f6st werden. Die Parasiten k\u00f6nnen dann durch vertikale, transplazentare \u00dcbertragung in infizierten Kuhherden persistieren und infizierte Tiere mehrfach abortieren. Makroskopisch ist an den abortierten Feten kein typischer Hinweis auf den Erreger zu erkennen. Histologisch sind disseminierte Nekroseherde und mononukle\u00e4re Zellinfiltrate im Herzen, in der Skelettmuskulatur und im Gehirn typisch, h\u00e4ufig mit erkennbaren Tachyzoiten, wobei Ver\u00e4nderungen in der Plazenta weniger deutlich sind.<br \/>\n<strong>Diagnostik: <\/strong>Erregernachweis mittels PCR aus fetalem Gewebe (Gehirn, Herz, Lunge); Antik\u00f6rpernachweis aus Serum des Muttertiers oder des Fetus<\/li>\n<\/ul>\n<ul>\n<li>\n<h4><em>Toxoplasma gondii<\/em><strong><em><br \/>\n<\/em><\/strong><\/h4>\n<p>ist der wichtigste infekti\u00f6se Aborterreger bei Schafen und Ziegen. Aufgrund der engen Verwandtschaft mit <em>Neospora caninum <\/em>sind \u00dcbertragung und Pathogenese \u00e4hnlich, zu wiederholten Fehlgeburten kommt es bei Toxoplasma gondii allerdings selten. Die orale Aufnahme der Oozysten erfolgt durch Futter, welches mit Katzenkot kontaminiert wurde. Eine trans-plazentare \u00dcbertragung ist ebenfalls m\u00f6glich. Die abortierten Feten weisen keine erregertypischen Merkmale auf, w\u00e4hrend die Plazenta auf den Kotyledonen kleine, wei\u00dfe, multifokale Nekrosen und die Membran \u00d6deme aufweist. Histologisch fallen nekrotische Herde in den Kotyledonen und im fetalen Gehirn auf, teilweise auch Zysten.<br \/>\n<strong>Diagnostik: <\/strong>Erregernachweis mittels PCR aus Kotyledonen oder fetalem Gewebe (Gehirn); Antik\u00f6rpernachweis aus Serum des Muttertiers oder des Fetus<br \/>\nAchtung: zoonotisches Potential!<\/li>\n<\/ul>\n<ul>\n<li>\n<h4><em>Tritrichomonas foetus<\/em><strong><em><br \/>\n<\/em><\/strong><\/h4>\n<p>kann in Rinderherden mit Natursprung relevant sein, da infizierte Stiere die protozo\u00e4ren Erreger \u00fcbertragen. Die Trichomonadenseuche geht mit Unfruchtbarkeit und sporadischem embryonalem Fr\u00fchtod einher. Am Fetus sind keine spezifischen L\u00e4sionen erkenn-bar, allerdings finden sich gro\u00dfe Mengen von Protozoen in den fetalen K\u00f6rperfl\u00fcssigkeiten und im Magen.<br \/>\n<strong>Diagnostik: <\/strong>Erregernachweis mittels PCR aus fetalen K\u00f6rperfl\u00fcssigkeiten oder fetalem Mageninhalt.<\/li>\n<\/ul>\n<h2>Infekti\u00f6se Aborte bei Neuweltkamelen<\/h2>\n<p>Neuweltkamele resorbieren bzw. verlieren bis zu 30 % ihrer Tr\u00e4chtigkeiten. Viele dieser Verluste bleiben \u00e4tiologisch ungekl\u00e4rt. Gleichzeitig zeigen Neuweltkamele eine Empf\u00e4nglichkeit f\u00fcr viele relevante Tierseuchenerreger. Wie auch bei anderen Tierarten ist in diesem Zusammenhang wichtig, dass der Nachweis eines Erregers im Abortmaterial nicht notwendigerweise bedeutet, dass diese Infektion die Ursache f\u00fcr den Abort darstellt.<\/p>\n<p>Von folgenden Infektionserregern wurden bereits im Zusammenhang mit Aborten bei Neuweltkamelen berichtet: BVDV, <em>Brucella abortus, Campylobacter fetus <\/em>ssp. <em>fetus, Coxiella burnetii, Salmonella <\/em>(<em>S.<\/em>) spp. (<em>S. dublin, S. typhimurium<\/em>), <em>Leptospira <\/em>spp., <em>Toxoplasma gondii, Neospora caninum <\/em>sowie opportunistische Keime wie <em>Escherichia coli, Trueperella pyogenes <\/em>oder <em>Yersinia enterocolitica. <\/em>Einzelne Fallberichte beschreiben Fehl- und Totgeburten nach Infektionen mit dem Equinen Arteritis-Virus (EAV), <em>Listeria mono-cytogenes, Streptococcus sanguinis, Corynebacterium pseudotuberculosis, Enzephalitozoon cuniculi <\/em>und der Pilzgruppe <em>Coccidioides<\/em>.<\/p>\n<h2>Hinweise zur Probennahme<\/h2>\n<p>Um die Abortdiagnostik zu optimieren, sind Proben von der Plazenta und vom Fetus sinnvoll. Die Erregerdiagnostik ist aussagekr\u00e4ftiger als die Serologie und die histologische Untersuchung kann mitunter eine wertvolle Erg\u00e4nzung sein (Abb. 1 und 2).<\/p>\n<p>F\u00fcr die bakteriologische und mykologische Untersuchung ist die Gewinnung von kontaminationsfreien Proben wichtig, da alle im Tupfer oder im Material vorhandenen Erreger angez\u00fcchtet werden. Ein gutes Medium daf\u00fcr ist fetaler Mageninhalt oder ein Pool aus fetalen Gewebeproben (Lunge, Leber, Niere). Im Mutterleib schluckt der Fetus das Fruchtwasser und wenn dieses infiziert ist, finden sich die Erreger im Mageninhalt wieder, welcher durch die Stallumgebung nicht kontaminiert wird und punktiert werden kann. Im Fetus zirkulierende Erreger reichern sich in den kapillarreichen Filterorganen Lunge, Leber und Niere an. Die Punktion von Mageninhalt und die Entnahme von Gewebeproben aus dem Fetus muss steril erfolgen. Dazu wird die Oberfl\u00e4che des Fetus mit z. B. Ethanol desinfiziert und mit steriler Nadel punktiert bzw. mit sterilem Skalpell und sterilen Handschuhen Gewebeproben oder Tupfer (mit Medium) von den Organen genommen.<\/p>\n<p>Auch die Proben f\u00fcr die Erregerdiagnostik mittels PCR sollten sauber genommen werden. Da hier selektiv auf bestimmte Erreger untersucht wird, ist eine Kontamination nicht ganz so kritisch. Es eignen sich Gewebeteile, Tupfer (ohne Medium) und w\u00e4hrend der Vir\u00e4mie bzw. Bakteri\u00e4mie auch EDTA-Blut.<\/p>\n<p>Wie beschrieben, werden durch viele Erreger typische histologische Ver\u00e4nderungen in bestimmten Geweben hervorgerufen. Geeignetes Proben-material f\u00fcr die histopathologische Untersuchung sind die Plazenta (Kotyledonen plus Teile der interkotyledon\u00e4ren Membran) und fetale Organe (Lunge, Leber, Herz als die wichtigsten und Gehirn\/ Kleinhirn, Niere, R\u00fcckenmark als gute Erg\u00e4nzungen). Wenn makroskopisch bereits Ver\u00e4nderungen erkennbar sind, sollten diese ausgew\u00e4hlt werden bzw. der \u00dcbergang vom normal erscheinenden zum ver\u00e4nderten Bereich. Die Organbiopsien m\u00fcssen in Formalin fixiert werden.<\/p>\n<p>Antik\u00f6rpernachweise aus dem Serum des Muttertieres k\u00f6nnen Hinweise bei der Erregersuche geben. Da sich die meisten Erreger nach der Infektion des Muttertieres erst h\u00e4matogen verbreiten und eine Plazentitis entsteht, in deren Folge es zum Abort kommt, sind zum Zeitpunkt des Tr\u00e4chtigkeitsverlustes meist die ersten Antik\u00f6rper nachweisbar. Durch einen positiven Antik\u00f6rpertiter wird allerdings lediglich der Kontakt mit einem Erreger best\u00e4tigt (oder eine Impfung \u2013 zwischen Infektions- und Impfantik\u00f6rpern kann i. d. R. nicht unterschieden werden). Titeranstiege, die durch die Untersuchung von Serumpaar-proben im Abstand von zwei Wochen festgestellt werden, sprechen f\u00fcr eine akute Infektion.<\/p>\n<p style=\"text-align: right;\"><em>Dr. Anna-Linda Golob<br \/>\nAna Gomez Vitores, DVM, PhD<\/em><\/p>\n<p>[\/vc_column_text][\/vc_column][\/vc_row][vc_row type=&#8220;vc_default&#8220; gap=&#8220;10&#8243; equal_height=&#8220;yes&#8220; css=&#8220;.vc_custom_1713769814380{margin-top: 30px !important;}&#8220;][vc_column][vc_row_inner][vc_column_inner css_animation=&#8220;none&#8220; css=&#8220;.vc_custom_1786436675620{margin-bottom: 20px !important;}&#8220; offset=&#8220;vc_col-xl-inherit vc_col-lg-inherit vc_col-md-12 vc_col-sm-inherit&#8220;][vc_column_text]<\/p>\n<blockquote>\n<h4><strong>Unsere Leistungen rund<\/strong> <strong> um Abort:<\/strong><\/h4>\n<p><span style=\"color: #000000;\"><strong>Symptomkomplex-<\/strong><strong>Profile<\/strong><\/span><\/p>\n<ul>\n<li><span style=\"color: #000000;\"><strong>Abortprofil Rind 1 <\/strong>(PCR: burnetii, N. caninum)<\/span><\/li>\n<li><span style=\"color: #000000;\"><strong>Abortprofil Rind 2 <\/strong>(Bakteriologie + Mykologie, PCR: BTV, BVDV, Chlamydien, burnetii, N. caninum, SBV)<\/span><\/li>\n<li><span style=\"color: #000000;\"><strong>Abortprofil kleine Wdk 1 <\/strong>(PCR: burnetii, T. gondii)<\/span><\/li>\n<li><span style=\"color: #000000;\"><strong>Abortprofil kleine Wdk 2 <\/strong>(Bakteriologie + Mykologie, PCR: BTV, Chlamydien, C. burnetii, T. gondii, SBV)<\/span><\/li>\n<li><span style=\"color: #000000;\"><strong>Abortprofil Kamele 1 <\/strong>(PCR: Chlamydien, C. burnetii, Leptospiren, N. caninum, T. gondii)<\/span><\/li>\n<li><span style=\"color: #000000;\"><strong>Abortprofil Kamele 2 <\/strong>(Bakteriologie + Mykologie, PCR: BTV, BVDV, Chlamydien, C. burnetii, Lepto-spiren, N. caninum, T. gondii, SBV)<\/span><\/li>\n<\/ul>\n<p><span style=\"color: #000000;\"><strong>Pathohistologie<\/strong><\/span><\/p>\n<ul>\n<li><span style=\"color: #000000;\">Organbiopsien von bis zu 3 Organen<\/span><\/li>\n<li><span style=\"color: #000000;\">mit erh\u00f6htem Aufwand: Organbiopsien von 4-6 Organen<\/span><\/li>\n<\/ul>\n<p><span style=\"color: #000000;\"><strong>Serologische<\/strong> <strong>Profile<\/strong><\/span><\/p>\n<ul>\n<li><span style=\"color: #000000;\"><strong>Abortprofil Rind <\/strong>\u2013 AK (BVDV, abortus, C. burnetii, Leptospiren, N. caninum)<\/span><\/li>\n<li><span style=\"color: #000000;\"><strong>Abortprofil<\/strong> <strong>kleine<\/strong> <strong>Wdk<\/strong> \u2013 AK (BDV, Chl. abortus, burnetii, Listerien, T. gondii)<\/span><\/li>\n<li><span style=\"color: #000000;\"><strong>Abortprofil Kamele <\/strong>\u2013 AK (Chlamydien*, C. burnetii, Leptospiren, N. caninum, T. gondii)<\/span><\/li>\n<\/ul>\n<\/blockquote>\n<p>[\/vc_column_text][\/vc_column_inner][\/vc_row_inner][vc_column_text]<strong>Weiterf\u00fchrende Literatur<\/strong><\/p>\n<ul>\n<li>\n<h6><span style=\"color: #999999;\"><strong>Hecker YP, Gonz\u00e1lez-Ortega S, Cano S, Ortega-Mora LM, Horcajo P. Bovine infectious abortion: a systematic review and meta-analysis. Front Vet Sci. 2023 Sep 29;10:1249410. doi:10.3389\/fvets.2023.1249410.<\/strong><\/span><\/h6>\n<\/li>\n<li>\n<h6><span style=\"color: #999999;\"><strong>Mee JF. Invited review: Bovine abortion\u2014Incidence, risk factors and causes. Reprod Domest Anim. 2023;58(Suppl 2):23-33. doi:10.1111\/rda.14366.<\/strong><\/span><\/h6>\n<\/li>\n<li>\n<h6><span style=\"color: #999999;\"><strong>Borel N, Frey CF, Gottstein B, Hilbe M, Pospischil A, Franzoso FD, Waldvogel A. Laboratory diagnosis of ruminant abortion in Europe. Vet J. 2014;200(2):218-229. doi:10.1016\/j.tvjl.2014.03.015.<\/strong><\/span><\/h6>\n<\/li>\n<li>\n<h6><span style=\"color: #999999;\"><strong>van den Brom R, Vellema P, Opsteegh M, van Engelen E, Roest HIJ, van der Wal FJ, Buijs R, van Roermund HJW. An accessible diagnostic toolbox to detect bacterial causes of ovine and caprine abortion. Pathogens. 2021;10(9):1147. doi:10.3390\/pathogens10091147.<\/strong><\/span><\/h6>\n<\/li>\n<li>\n<h6><span style=\"color: #999999;\"><strong>Eggimann H, Rediger I, Hirsbrunner G, Zanolari P. Infectious and noninfectious causes for pregnancy loss in South American camelids &#8211; A review. Anim Reprod Sci. 2024 Sep;268:107571. doi:10.1016\/j.anireprosci. 2024.107571.<\/strong><\/span><\/h6>\n<\/li>\n<li>\n<h6><span style=\"color: #999999;\"><strong>van den Brom R, Neale S, Jourdain E, Matthijs A, Mori M, Rousset E, Mertens-Scholz K, McNeilly TN, Hurtado A. Detection of abortifacient agents in domestic ruminants, with a specific focus on Coxiella burnetii. Open Res Eur. 2025;5:94. doi:10.12688\/openreseurope.19270.2<\/strong><\/span><\/h6>\n<\/li>\n<\/ul>\n<p>[\/vc_column_text][\/vc_column][\/vc_row][vc_row type=&#8220;vc_default&#8220; gap=&#8220;10&#8243; equal_height=&#8220;yes&#8220; css=&#8220;.vc_custom_1761741256523{margin-top: 30px !important;}&#8220;][vc_column width=&#8220;1\/6&#8243; css=&#8220;.vc_custom_1733824634434{background-color: #E7E7E7 !important;}&#8220;][vc_icon icon_fontawesome=&#8220;fa fa-solid fa-file-pdf&#8220; size=&#8220;xl&#8220; align=&#8220;center&#8220; custom_color=&#8220;#e51e1e&#8220; css_animation=&#8220;none&#8220; css=&#8220;.vc_custom_1788273754424{margin-top: 10px !important;margin-bottom: 10px !important;padding-top: 20px !important;padding-bottom: 20px !important;}&#8220; color=&#8220;custom&#8220; link=&#8220;url:https%3A%2F%2Flaboklin.de%2Fwp-content%2Fuploads%2F2026%2F09%2Fla_nutztier_abortdiagnostik-bei-wiederkaeuern-und-neuweltkamelen_09.2026.pdf|title:LABOKLIN%20aktuell%20Nutztiere%2009.2026|target:_blank&#8220;][\/vc_column][vc_column width=&#8220;5\/6&#8243; 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