{"id":1427749,"date":"2019-01-09T10:47:33","date_gmt":"2019-01-09T09:47:33","guid":{"rendered":"https:\/\/laboklin.de\/infektioese-konjunktivitis-und-keratitis-bei-hunden-und-katzen-keimverteilung-resistenzlage-therapieoptionen\/"},"modified":"2024-05-03T12:29:41","modified_gmt":"2024-05-03T10:29:41","slug":"infektioese-konjunktivitis-und-keratitis-bei-hunden-und-katzen-keimverteilung-resistenzlage-therapieoptionen","status":"publish","type":"post","link":"https:\/\/laboklin.de\/de-at\/infektioese-konjunktivitis-und-keratitis-bei-hunden-und-katzen-keimverteilung-resistenzlage-therapieoptionen\/","title":{"rendered":"Infekti\u00f6se Konjunktivitis und Keratitis bei Hunden und Katzen: Keimverteilung, Resistenzlage, Therapieoptionen"},"content":{"rendered":"

[vc_row][vc_column width=“2\/3″][vc_column_text css=““]Die seit dem 01.03.2018 geltende Neufassung der Tier\u00e4rztlichen Hausapothekenverordnung (T\u00c4HAV) hat auch bez\u00fcglich der Therapie von (Kerato-)Konjunktivitiden einige Fragen aufgeworfen. Das Hauptproblem f\u00fcr den Praktiker seit Inkrafttreten der T\u00c4HAV liegt in der Tatsache, dass bisher bei (Kerato-)Konjunktivitiden von Hunden und Katzen h\u00e4ufig antibiotische Wirkstoffe eingesetzt wurden, die in Deutschland keine Zulassung f\u00fcr die Anwendung bei diesen Tierarten haben oder sogar antibiotische Reserveantibiotika aus der Stoffgruppe der Gyrasehemmer enthalten. Daher haben wir die infekti\u00f6sen Ursachen dieser Krankheitsbilder mit aktuellen Daten aus der Diagnostik verglichen und zeigen die Resistenzlage der beteiligten Erreger gegen ausgew\u00e4hlte Wirkstoffe.<\/p>\n

(Kerato-)Konjunktivitis bei Katzen<\/h2>\n

Prim\u00e4re Infektionen bei den Katzen sind am h\u00e4ufigsten durch das feline Herpesvirus-1 (FHV-1) verursacht, dicht gefolgt von den Chlamydien. FHV-1 vermehrt sich in den Epithelzellen \u2013 auch denen der Cornea \u2013 weshalb eine Sch\u00e4digung der Cornea (Keratokonjunktivitis) mit m\u00f6glicherweise anschlie\u00dfender Ulzeration auftreten kann. Diese Ulzera sind fast immer sekund\u00e4r bakteriell infiziert. Ulzera sind eine Komplikation, die im Zusammenhang mit einer Chlamydieninfektion seltener auftritt. Chlamydia felis ist hochkontagi\u00f6s und wird in Augenund Nasensekreten ausgeschieden. Eine weitere prim\u00e4re, jedoch deutlich seltenere Ursache von Konjunktivitiden bei der Katze ist Mycoplasma felis. Die \u00fcbliche Nachweismethode f\u00fcr diese drei prim\u00e4ren Erreger ist die PCR. Wir erfassen alle drei Erreger in einem Augenprofil. Einsendematerial ist ein mit einem trockenen Tupfer gewonnener zellreicher Augenabstrich, der ohne Transport medium versendet wird! In Abb. 1 finden Sie die Nachweish\u00e4ufigkeit der einzelnen Erreger aus der zweiten H\u00e4lfte des Jahres 2017 (Gesamtzahl der Proben: 481).<\/p>\n

Die PCR erbrachte in 46% der F\u00e4lle einen positiven Nachweis, wobei 39% aller untersuchten Proben eine Monoinfektion mit einem der Erreger aufwiesen und 7% der Proben eine Mehrfachinfektion. Bei Mehrfachinfektionen traten am h\u00e4ufi gsten Kombinationen mit Mykoplasmen auf, ein Ergebnis, welches sich mit Studien aus anderen L\u00e4ndern deckt. Koinfektionen sind laut einer Studie mit schwereren klinischen Symptomen verbunden als Einzelinfektionen. FHV-1 gilt zwar als der h\u00e4ufi gste prim\u00e4re Erreger der genannten Symptomatik, l\u00e4sst sich aber bei einer l\u00e4nger andauernden Infektion nicht mehr nachweisen, da die Virusausscheidung auf maximal 10 Tage nach der Infektion begrenzt ist. Dadurch f\u00fchren die Chlamydien beim PCR-Nachweis, der h\u00e4ufig erst im chronischen Zustand oder nach einer fehlgeschlagenen ersten Therapie durchgef\u00fchrt wird, die Nachweish\u00e4ufi gkeit an. FHV-1 kann aber \u2013 wie alle Herpesviren \u2013 nicht eliminiert werden, sondern verbleibt latent an verschiedenen R\u00fcckzugsorten des K\u00f6rpers. Eine erneute Virusausscheidung, ausgel\u00f6st durch andere Erkrankungen, Stress oder eine Kortikosteroidbehandlung, kann jederzeit auftreten und auch zu erneuter Symptomatik f\u00fchren.<\/p>\n

Milde Formen der FHV-1-bedingten (Kerato-) Konjunktivitis sind oft selbstlimitierend. In schweren klinischen F\u00e4llen oder bei andauernden Rezidiven sollten dagegen orale oder topische antivirale Medikamente eingesetzt werden. F\u00fcr Chlamydien und Mykoplasmen sind keine Methoden zum routinem\u00e4\u00dfigen Resistenztest etabliert. In der Therapie greift man auf Antibiotika mit bekannter Wirkung gegen diese Erreger zur\u00fcck. Dies ist auch mit der T\u00c4HAV konform. Tetrazykline, Chloramphenicol oder Gyrasehemmer \u2013 drei- bis viermal t\u00e4glich als Augensalbe oder -tropfen angewendet \u2013 zeigen eine gute Wirkung gegen diese Erreger. Bei den Chlamydien reicht in einigen F\u00e4llen, besonders wenn die Ausscheidung auch \u00fcber andere Schleimh\u00e4ute z.B. des Genitaltraktes erfolgt, die topische Therapie nicht aus, um die Erreger bei den Katzen zu eliminieren. In diesen F\u00e4llen ist eine zus\u00e4tzliche orale Therapie \u00fcber 30 Tage mit Doxycyclin angezeigt, besonders in Mehrkatzenhaushalten. Hier sollten dann alle Katzen des Haushaltes mit Doxycyclin behandelt werden. Ein solches Vorgehen sollte, schon allein wegen der starken Nebenwirkungen des Doxycyclins, auf jeden Fall durch einen PCR-Nachweis gesichert werden.<\/p>\n

H\u00e4ufig wird die urspr\u00fcnglich prim\u00e4re Infektion sekund\u00e4r mit fakultativ pathogenen, aeroben Bakterien besiedelt. Gerade FHV-1-bedingte Ulzera sind oft sekund\u00e4r bakteriell infiziert. 866 Tupferproben von Augenabstrichen aus dem Jahr 2017 wurden bakteriologisch ausgewertet. Abb. 2 zeigt die Keimverteilung dieser Proben. Staphylokokken nehmen mit Abstand den gr\u00f6\u00dften Teil der nachgewiesenen Keime ein, jedoch weisen nur 4% dieser Staphylokokken am Auge Multiresistenzen auf.<\/p>\n

Bei leichten klinischen F\u00e4llen ist eine empirische topische Therapie oft ausreichend, da durch die lokale Anwendung hohe Wirkstoffspiegel direkt am Infektionsort erreicht werden. Eine Zytologie kann Aufschluss dar\u00fcber geben, ob Hinweise auf eine Entz\u00fcndung mit bakterieller Beteiligung vorliegen. Probenentnahmen sollten vor der Applikation von reinigenden Substanzen oder Fluoreszin durchgef\u00fchrt werden. Tupfer f\u00fcr die bakteriologische Untersuchung mit Resistenztest m\u00fcssen mit Transportmedium<\/strong> versendet werden! Nach einer neuen Studie der Universit\u00e4t Berlin gemeinsam mit Laboklin, verbessert eine Anfeuchtung des Tupfers mit steriler physiologischer Kochsalzl\u00f6sung die Nachweisrate von grampositiven Keimen. Dabei sollte nicht direkt im Eiter getupfert werden, da die dort enthaltenen Keime in phagozytierter Form vorliegen und daher m\u00f6glicherweise nicht anz\u00fcchtbar sind. Eine in der Praxis angefertigte Diff-Quick-F\u00e4rbung aus einem zweiten Tupfer f\u00fcr die Zytologie gibt zwar keine Hinweise auf das Vorliegen grampositiver oder gramnegativer Keime, jedoch darauf, ob sich St\u00e4bchen oder Kokken im Pr\u00e4parat befinden. Betrachtet man nun die Keimverteilung wird klar, dass St\u00e4bchen immer dem gramnegativen Bereich zuzuordnen sind und Kokken mit Ausnahme von Acinetobacter spp.<\/em> immer dem grampositiven Bereich. Acinetobacter spp.<\/em> spielen jedoch keine pathogene Rolle bei Konjunktivitiden. Deshalb haben wir bei der Darstellung des aktuellen Resistenzverhaltens jeweils St\u00e4bchen und Kokken zusammengefasst, da die Ergebnisse der Zytologie so direkt auf die empirische Auswahl eines Antibiotikums \u00fcbertragen werden k\u00f6nnen (s. Abb. 3 und 4).[\/vc_column_text][\/vc_column][vc_column width=“1\/3″][vc_column_text css=““]<\/p>\n\n\t\t\t